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分子生物學實驗管理程序文件-資料下載頁

2024-11-03 03:15本頁面

【導讀】施全面質量管理,保證實驗質量。員,并明確了實驗室各項規(guī)章。因擴增與產物分析區(qū)。不得混用,須貼上不同標簽予以區(qū)別。,必須更換工作服,穿上鞋套。工作人員和研究生負責采集、接收標本。,將標本送入標本制備區(qū)。圾袋,將垃圾帶出實驗室由衛(wèi)生員統(tǒng)一送交醫(yī)院集中處理。,記錄紫外燈使用情況。劑,其余試劑要立即收好放回冰箱內。的詳細保存情況。在消毒有效期內。施康消毒液或類似消毒液的廢液缸中,還原實驗臺面。標識的記錄本、紙和筆。次性鞋套,戴手套,手套需常更換。、類型和標本數量。行加樣,加樣后低速6000rpm離心數秒后,將其放入傳遞窗。套置于專用污物桶中。,記錄結果,打印報告。,記錄儀器使用時間和運行狀態(tài)。,嚴格遵守操作規(guī)程。,嚴禁在實驗室內抽煙,吃零食。在科主任的監(jiān)督,由實驗室負責人領導下負責實施。,工作區(qū)域須穿工作服,離開時應換下。,并動作幅度盡量小。,不得吸煙,不得做與實驗無關的事。

  

【正文】 ,取出搖勻 ,此為 2%瓊脂糖凝膠液。加熱過程中要不時搖動 ,使 附于瓶壁上的瓊脂糖顆粒進入溶液。加熱時應蓋上封口膜 ,以減少水份蒸發(fā)。 ? 膠板的制備:將膠槽置于水平支持物上 ,插上樣品梳子。向冷卻至 5060℃的瓊脂糖膠液中加入 Goldview溶液 充分混勻, 61 倒膠時的溫度不可太低,否則凝固不均勻,速度也不可太快,否則容易出現(xiàn)氣泡。待膠完全凝固后撥出梳子 ,注意不要損傷梳底部的凝膠,然后向槽內加入 TBE 稀釋緩沖液至液面恰好沒過膠板上表面。因邊緣效應樣品槽附近會有一些隆起 ,阻礙緩沖液進入樣品槽中,所以要注意保證樣品槽中應注滿緩沖液。 瓊脂糖濃度的配置可參照下表 : 瓊脂糖濃度 (%) 線型 DNA 分子的分離范圍 (Kb) 5~ 60 1~ 20 ~ 10 ~ 7 ~ 6 ~ 3 ~ 2 ? 樣品制備與加樣:溶解于 TBE或 THE內的樣品應含指示染料( %溴酚藍或桔黃橙)、蔗糖( 10% 15%)或甘油( 5% 10%),也可使用 % Ficoll增加比重,使樣品集中,每齒孔可加樣 510μ g。每次電泳應該加相應的Marker以判斷 PCR產物的分子量。 ? 電 泳:一般電壓為 515V/cm。對大分子的分離可用電壓 5V/cm。電泳過程最好在低溫條件下進行,電泳時間一般為 30分鐘。 ? 檢測:將電泳好的膠置于凝膠成像系統(tǒng)中用紫外光觀察電泳結果。 3. RNA 提取 ? 溶血:加 300ul 的肝素或 EDTA 二鈉抗凝的全血到含 RBC Lysis Solution 900ul 的 EP 管 , 室溫靜置 1min,期間,輕輕顛倒混勻 10次。 13000 ~16000 rpm 離心 20秒。棄上清液,將管底的白色沉淀用槍頭吹散,使白細胞在殘留的液體中懸浮。 ? 組織細胞:將凍存或新鮮的組 織,加入液氮讓組織塊完全冷凍,充分碾磨。 62 加入 1ml 的 TriZOL,分混勻,室溫靜置 5min。 ? 取 106~7細胞加入 1ml 的 TriZOL 中,充分混勻,室溫靜置 5min。 ? 再加入 200ul的氯仿,充分混勻,室溫靜置 5min。 4℃, 13000rpm 離心 15min。 ? 取上清液 500ul,加入等量的異丙醇。充分混勻室溫靜置 5min。 4℃, 13000rpm離心 10min。 ? 棄上清液,加入 75%的酒精 500ul, 4℃, 13000 rpm 離心 10 分鐘 。 (可將RNA 置于 70℃冰箱保存,最長時間不得超過一個月 ) ? 棄上清液, 加入 20ul 的 DEPC 水,混勻。 紫外分光光度計測定 OD260/280,比值大于 即可。 【 PCR檢測的項目和一般步驟】 RTPCR ( 15ug) RNA加入含 RTmix 16ul 的 EP管中,高速離心 10秒 → 65℃ 5分鐘→冰浴 →加 MMLV → 37℃ 60分鐘, 70℃ 10分鐘, RTmix ( 4 dNTPs, random primer ,5 buffer, RNA out, DTT) (Invitrogen公司產品 ) actin 為內參照檢測逆轉錄 的每一個標本是否成功 引物序列: 5’ GACTACCTCATGAAGATC3 5’ GATCCACATCTGCTGGAA3’ 加 2ul的 cDNA入含 23ul 的 PCRmix 中, 94℃ 5分鐘 → 94℃ 1分鐘 58℃ 1分鐘 72℃ 1分鐘, 共擴增 30 個循環(huán) → 72℃ 10分鐘 ( PCR 反應體系 25μl ,含cDNA 模板 , 10 buffer 2. 5μl , mmol/L MgCl2 , 4 dNTPs ,引物各為 20 pmol , Taq DNA 聚合酶 1 U 。 ) (Promega 公司產 品 ) 電泳條帶: 500bp 63 二十 五 、 ABI 7500 型核酸擴增熒光檢測儀操作維護及分析程序 1. 目 的: 保證 ABI 7500 型擴增儀正常運轉,性能穩(wěn)定,保證擴增及結果分析的標準化和準確率。 2. 適用范圍 : ABI 7500 型擴增儀 3. 操作人員 : 鄭建建 等。 4. 系統(tǒng)維護 微軟 Windows XP 操作系統(tǒng)的維護 硬盤驅動器每月 29 日運行一次碎片清除程序,使用 Norton Utilities或類似軟件?,F(xiàn)以 Norton為例: 放入 Norton Utilities光盤,運行 Setup文件。 安裝完后取出 Norton Utilities光盤,重新啟動計算機。 運行 Norton Utilities 軟件,并啟動其清理碎片 /優(yōu)化程序。 運行完成后,檢查以確信無嚴重錯誤記錄,退出 Norton Utilities。 以后每次只需運行 Norton Utilities 軟件中的清理碎片 /優(yōu)化程序。 64 7500擴增儀的維護 樣品槽的清潔 樣品槽每月 29 日左右進行一次清潔,如出現(xiàn) 樣品槽污染情況則隨時清潔。 運行 25℃ HOLD 程序使樣品槽溫度達到室溫。關閉儀器,等待 10 分鐘。 從樣品槽移去樣品架。 在樣品槽中加入少量 95%乙醇,用尼龍棉簽或塑料桿擦洗反應孔。 用干棉簽吸干乙醇。 確保 7500 光源檢測器未蓋住樣品槽時 ,打開 PCR 儀,并升溫到 50℃運行 10分鐘,以蒸發(fā)掉多余的乙醇。 7500光路系統(tǒng)的維護 校正 ROIs 在 7500 系統(tǒng)得到任何結果之前,必須校正增益范圍( ROIs),應該按 照如下步驟校正新的增益范圍數值。不得由一般實驗人員進行該項操作。 從 Instrument菜單選擇 Calibrate。 在 ROI Inspector 窗口中選 Display Properties。 在 4000,確定 Show Saturation已被選中, OK。 在 Capture Image From 中選 Filter A,曝光時間為 256ms, 65 Snapshot。 檢查圖像飽和度。若曝光時間為 256ms 時拍攝的圖像中沒有過飽和的提 示,增加曝光時間并再次 Snapshot,直至圖像中出現(xiàn)過飽和,然后將曝光時間往回調。 如果所選曝光時間適宜,并且圖像中樣品孔亮度充分又無任何飽和出現(xiàn),單擊 Generate Calibration 按鈕。 如果圖像中所有樣品孔 ROIs 亮度充分,綠色光圈將會出現(xiàn)在每一個反應管區(qū)域周圍。如果 ROIs 不能校正,重復 e~ f步。 單擊 Save Calibration。這樣可保存濾光片 A新產生的 ROI校正數值。 ROI Inspector 窗口中, Masks Loaded 欄的Filter A 后會顯示“ OK”。 對其它三個濾光片重復 b~ h 步。當完成后,在 ROI Inspector窗口中點擊 Done。 如果圖像中 ROIs 亮度不充分或過飽和,將會有一條錯誤信息提示。選擇更適宜的曝光時間并再產生校正數值,直至ROIs 被校正合適。 檢查樣品槽的熒光污染 檢查樣品槽的熒光污染每月 29 日進行一次,如有需要隨時進行。 開啟 ABI PRISM 7500 型核酸擴增熒光檢測儀電源。 66 從 Start 菜 單或桌面點選運行 ABI PRISM 7500 SDS 軟件。 。 7500 儀器滑門向前滑移蓋住樣品槽,并關緊。 用 FAM 濾光片,打開 ROI Inspector 窗口,曝光時間設為2048ms。 觀察 96 孔中背景熒光。如孔有顯著熒光則表示該孔存在熒光污染。 測定一個合乎標準的背景熒光水平。①推開 7500 型核酸擴增熒光檢測儀滑門,鎖定。 ②將一塊新且干凈的空樣品板不帶蓋的放入樣品槽。③前推滑門解鎖,滑下關閉。④設置曝 光時間為 2048ms,照像。 ,依照 “樣品槽的清潔”中的方法清洗它們。清洗后按照以上 ~ 檢查樣品孔。 更換鹵素燈 儀器使用大約 2020小時后應更換鹵素燈。 關閉儀器,冷卻 15 分鐘。 將樣品板放入儀器樣品槽,關閉滑門。在儀器的頂部向上打開燈艙門。 擰下固定燈罩的螺絲,將燈罩向前滑移,使其從設備上取下。 將舊燈泡向前滑移,使其從夾狀支架上取下,并將燈泡從燈座上拔下。 67 把新燈泡尾部的插桿插入燈座上的插孔,使二者連接起來。 使燈的長軸與儀器前向平行(即豎直于地面),將新燈泡滑回燈位。 在燈艙門處于打開狀態(tài)下,打開儀器,確證在儀器運行時燈也能打開。 蓋上燈罩,擰緊螺絲,關上燈艙門。 若新鹵素燈不工作, 7500 型核酸擴增熒光檢測儀電源保險絲可能有問題。 校準 ABI PRISM 7500 型核酸擴增熒光檢測儀為復雜精密儀器,其校準工作需由專業(yè)工程 師進行。實驗室應與儀器廠家達成協(xié)議,定期校準儀器。 平時 通過對室內質控圖的分析,發(fā)現(xiàn)實驗結果出現(xiàn)系統(tǒng)誤差后,又經過分析排除了 試劑和人員誤差,應懷疑是否儀器出現(xiàn)了檢測偏差從而需要校準。 實驗室人員根據上述“光路系統(tǒng)的維護”部分的內容調節(jié)光路,可初步確定儀器是否光路原因引起的檢測偏差,通過光路調節(jié)解決問題。若問題不出在光路系統(tǒng),則應聯(lián)系儀器廠家派技術人員來進行校準。 附:注意事項 a) 儀器應放置在水平堅固的平臺上,外界電源系統(tǒng)電壓要匹配,并要求有良好的接地線。 b) 環(huán)境溫度保持 68 在 23℃左右,濕度保持在 60%左右。 c) 儀器應配備功率≥3000W 的穩(wěn)壓器。 d) 儀器應定 期清潔維護。 e) 儀器使用時應嚴格遵守上述 使用步驟。 5 擴增分析程序 核酸擴增標準程序 擴增反應前須先在 7500 SDS 軟件的設置面板上按照事先排好的標本位置進行設置。每次實驗除了待檢標本,還要包括一個陰性對照、一個陽性對照、一個陽性室內質控品、一組陽性標準品( 5 個梯度 10 10 10 10 102)。 檢查電腦與儀器的聯(lián)線是否正常,電腦應處于外接電源供電狀態(tài)。 依次打開電腦顯示器和電腦主機的電源開關,進入 Windows XP 界面。 接著打開 PCR儀電源 開關,預熱 5分鐘。 雙擊 ABI PRISM 7500 SDS Software 圖標,打開軟件。 從 File 菜單中選擇 New,在 New Document 窗口中,在 Assay菜單中選擇 Absolute Quantitation,打開一空白設置面板。 在 Detector Manager 窗口里新建并添加 detector 到 Well Inspector中。 在 Well Inspector 窗口中設定樣品種類與名稱,數量。 點選此 detector前的 Use 選框。 在 Task 欄中選擇樣品種類: Standard-陽性標準品梯度, 69 NTC-陰性對照 Unknow-未知樣品 再在 Sample Name 欄中依次輸入樣品名稱。 在 Quantity 欄中,輸入陽性標準品的數量值(如 10000、100000)。 點 Instrument 可在此頁面設定熱循環(huán)參數。 檢查設置正確與否。 在 File 菜單中的選 Save,在彈出的對話框中的 File Name欄 里輸入文件 名,點擊 Save。 運行程序: a) 在設置完程序文件的 Instrument 頁面,點Start 鍵,即可運行。 b) 反應結束后,點選 File中的 Save,保存實驗結果。 結果分析標準程序 對于 7500 結果曲線的分析,應按以下步驟進行:全部曲線 —— 陰性對照 —— 陽性對照 —— 陽性室內質控品 —— 陽性標準品 —— 逐個分析(標出陽性標本和可疑標本) —— 調整參數,獲得較好的標準曲線,顯示定量結果 —— 登記,發(fā)報告。 整體曲線的觀察 :將所有曲線選中進行整體觀察。 a) 觀察是否存在污染情 況(包括標本污染和試劑污染),特別應注意大量曲線在同一 Ct 值出現(xiàn)上漲的情況。 b) 觀察是否有光路傳導阻滯或電壓波動等機器原因形成的異常曲線。 70 陰性對照的分析。陰性對照:試劑中加入與待檢標本進行同樣處理的已知陰性標本。 作用:用以監(jiān)測實驗室和前處理過程中是否存在污染。 陽性對照的分析。陽性對照:試劑中加入與待檢標本進行同樣處理的已知陽性標本。 用以監(jiān)測實驗能否正常檢出陽性標本,避免假陰性的出現(xiàn)。 陽性室內質控品的分析。 陽性室內質控品:試劑中加入與待檢標本進行同樣處理的已 知或未知濃度的陽性室內質控血清。用以監(jiān)控日常實驗的精密度。 陽性標準品的分析。 a) 各梯度曲線的分布是否均勻,若各梯度曲線均未分開,則表明陽模稀釋可能存在問題,提示實驗中存在較大人為誤差。 b) 觀察各曲線的 Ct 值
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