抗性淀粉制備技術(shù)研究(編輯修改稿)
2024-07-21 03:56 本頁面
【文章內(nèi)容簡介】 級微膠囊的包衣。Dimantov等用高直鏈淀粉玉米淀粉經(jīng)流化床工藝制得食品級微膠囊的包衣(壁材)，分散性能穩(wěn)定但會被胰淀粉酶全部酶解。提高包衣稠度可使抗酶解穩(wěn)定性有所提高。％，但是包衣表面出現(xiàn)裂紋。研究認為，應進一步解決裂紋問題，RS與高直鏈淀粉玉米淀粉的組合作為微膠囊包衣材料很有發(fā)展前途。輔助治療。應用于霍亂引起嚴重營養(yǎng)不良及腹瀉兒童口服補水治療的輔助劑 ，不影響腸道粘膜的恢復[4]。 抗性淀粉的研究展望國外關(guān)于RS的研究已經(jīng)系統(tǒng)化，國內(nèi)研究也日漸活躍。目前，對RS的生產(chǎn)、分析測定及RS的生理功能均作了廣泛研究，但尚不完善，還需進一步深入。在RS的分類上，還需進一步弄清RS結(jié)構(gòu)，并對RS進行細分，比如明確不同來源的同類RS的差異及生理功能。在RS的生產(chǎn)上，還需進一步完善工藝，降低成本，提高RS產(chǎn)品在食用、加工過程中抗性性能的穩(wěn)定性。在RS的分析測定上，還需進一步完善測定方法。食物中RS含量目前尚無統(tǒng)一、穩(wěn)定的標準測定方法，并影響到準確估計人體的攝人情況[5]。目前對人體RS攝人量的估計存在一個較大的范圍，從4 g／d到20—30 g／d，后者是按每人每日淀粉攝人量200—300 g估計的。有調(diào)查表明，歐洲人RS的攝人量為2—3 g／d ，而Kontraszti等的研究發(fā)現(xiàn)由于無法排除殘留物中5％—42％的未知雜質(zhì)，推測目前的數(shù)據(jù)可能低估了歐洲人群的實際攝人量。Brighenti 則測得意大利人RS攝人量為7．2—9．2 g／d，平均8．5 g／d。因此準確測定食物中實際發(fā)生作用的RS，從而估計人體RS攝人水平仍然是進一步研究的重點[6]。2 實驗材料 原料普通玉米淀粉、耐熱α—淀粉酶、糖化酶、3，5—二硝基水楊酸、氫氧化鉀、鹽酸、丙三酮、乙酸、磷酸二氫鈉、DMS0(二甲基亞砜)、葡萄糖、濃硫酸、無水乙醇、氫氧化鈉、碘、碘化鉀。容量瓶、燒杯、錐形瓶、滴管等玻璃儀器、篩子。 設備電熱鼓風干燥箱(GZX 9140 MBE)、電子天平、電熱恒溫水浴鍋（DZKW）ph計、攪拌機、海爾冰箱、恒溫培養(yǎng)箱、離心機(LG 10)、立式電熱壓力蒸汽滅菌器(LSZX 50KB)、722S可見分光光度計。3 實驗方法 試劑的制備（1） 1 mgmL 葡萄糖標準液：準確稱取1 g的無水葡萄糖，待溶解后定容至1000 mL[7]。（2） DNS顯色液：準確稱取無水的3，5— g溶解待用，無水氫氧化鈉40 g溶解后移入500 mL容量瓶，冷卻后定容，將水楊酸溶解液移入1000 mL容量瓶并加入325 mL的氫氧化鈉，再加入15 mL丙三醇溶解定容至1000 mL貯存于棕色試劑瓶中，以上試劑均為分析純，水為蒸餾水[11]。（3） 2M KOH溶液：，待溶解后定容至100 mL。（4） 高溫耐熱α—淀粉酶、糖化酶酶活的測定采用碘量法，兩種酶液的配置：分別兩種酶取1g，溶解后過濾到100mL的容量瓶中，轉(zhuǎn)移到試劑瓶中保存到4℃的冰箱中。比活分別是190 u/ml 、630 u/ml[8]。 方法 RS 的分離提純RS 的分離提純工藝：調(diào)淀粉乳→調(diào)pH→加熱預糊化→壓熱處理→冷卻室溫→4攝氏度放置24h得到淀粉凝膠→攪拌剪切→調(diào)pH →加入耐高溫α 淀粉酶(90℃, 水浴30min , 不斷攪拌) →冷卻→調(diào)pH →加入葡萄糖淀粉酶(60℃, 24 h) →冷卻→反復離心(3 000 r/ min , 20 min) →棄上清液→加入2 mol/ L KOH 溶液充分溶解→調(diào)pH →加入耐高溫α 淀粉酶(90℃, 水浴30min , 不斷攪拌) →冷卻→調(diào)pH →加入葡萄糖淀粉酶(60℃, 水浴1h)→冷卻→水洗→反復離心→收集上清液→定容至100 mL→采用DNS比色法測定還原糖→[9]。 RS 的分離操作要點：調(diào)酸度時要將淀粉混勻后，pH計放入溶液后玻璃棒攪拌下讀的穩(wěn)定數(shù)據(jù)為準。而且pH計在使用以前要校準：選擇setup按鈕，然后分別將試筆放入兩種標準液，儀器會校準到準確讀數(shù)；因為酸度、壓熱溫度，時間、淀粉濃度是實驗探究的因素，所以在做單因素試驗時要保持其他條件不變，盡量保持相同條件；預糊化是在80℃條件下攪拌8 min，壓熱處理以前要用塑料薄膜封住錐形瓶瓶口，以防質(zhì)量的變化；取淀粉凝膠10 g與燒杯中再加8 ml的蒸餾水，用攪拌機攪拌20 min；耐高溫α 淀粉酶、葡萄糖淀粉酶液分別加2 ml、3 ml,第二次再加的兩都是1 ml；離心底部殘留絮狀團即為樣品中的RS，用含水的IMS或乙醇（50%）洗滌絮狀團，洗滌后離心，再重復一次洗滌離心，收集離心后獲得的絮狀物，加KOH液5 ml溶解；準確從容量瓶中取l mL樣液加入到50 mL的容量瓶中， mL的DNS在沸水浴中煮5 min后流水迅速冷卻，定容搖勻，空白調(diào)零。20 min后在520 nm的吸收光譜波長下測定吸光值。 葡萄糖標準曲線的測定 準確取l、12 mL的葡萄糖標準液分別加入到50 mL的容量瓶中，各加5 mL的DN
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