【文章內容簡介】 將PPV抗原加入酶標板孔內，每孔100ul，37℃作用1h后置4℃冰箱過夜：棄去孔內液體，用洗滌夜洗3次，每次3分鐘，用吸水紙拍干：各孔加入封閉液100ul。37℃：待檢血清經56℃ 30分鐘滅活后用洗滌液稀，每孔加入100ul，37 ：用洗滌液將酶標抗體按工作濃度稀釋，每孔100ul，37 1h，（OPDH2O2）：每孔100ul室溫避光顯色25分鐘：每孔加50ul終止液反應終止反應 ：在上酶聯(lián)檢測儀490nm波長處讀數，按1∶20稀釋后作間接ELESA實驗，測定490nm波長處OD值，規(guī)定以60 份血清的平均OD值加上3倍標準差作為判定陰陽性的臨界值IFA將分離毒第5代毒接種于Marc145，培養(yǎng)，培養(yǎng)48h，冷丙酮固定10min，分別加入1∶20的PRRSV\HCV、PPV\PRV高免血清，PRRSV陰性血清，37℃1h， PBS洗滌3次，再加入1∶40瑩光標記兔抗豬IgG，37℃ 1h, ，甩干，熒光顯微鏡下觀察。設PRRSV美洲株和未接毒細胞對照病毒的粗提純濃縮（中性鹽沉淀法）（以偽狂犬病病毒為例）原理：病毒在45%以上飽和的硫酸銨溶液中沉淀，且保持其感染性。一．實驗步驟：將病毒液反復凍融3次——，于4 ℃冰箱攪拌沉淀過夜——離心沉淀——棄上清——用適量的水或（PBS）懸浮——裝透析袋透析以除去硫酸銨再濃縮到原液的40倍。1．病毒材料：將偽狂犬病病毒接種于BHK21細胞，病變后收集細胞培養(yǎng)物，反復凍融3次，即為樣品材料。2．病毒提純濃縮先將細胞培養(yǎng)物3000rpm離心30min(4℃)，棄去細胞碎片及雜質，收集上清夜，攪勻后置4℃冰箱攪拌沉淀過夜。然后5000rpm離心40min（4℃），去上清，沉淀用適量的滅菌ddH2O懸?。ㄈ缭w積的20%），裝與透析袋中，于ddH2O中攪拌透析，每半個小時換一次液，共換5次，第5次透析過夜，透析完成后，取出，用聚乙二醇或蔗糖將病毒濃縮至原體積的1/40，即得初步提純的病毒液。分子病毒實驗技術一．PCR (一)PCR步驟：1） 變性 加熱至9095℃，氫鍵斷裂，雙鏈解離成單鏈。2） 復性 降溫至425562℃，使引物與其互補的摸板在局部形成雜交DNA雙鏈。3） 延伸 72℃，在DNA聚合酶、4種dNTP、Mg+2存在條件下，引物延長，新鏈合成。（二）幾種PCR摸板的處理方法1）細菌：挑細菌于離心管中，加適量ddH2O，渦懸，于沸水浴中變性10min（電爐，飯盒，帶孔泡沫塊）速置冰浴中，12000rpm 離心數秒，取上清作模板?；蛉〖毦囵B(yǎng)液200ul，12000rpm 2min去上清，加80100ul水懸浮，于沸水浴中變性10min，迅速置冰浴中，12000rpm離心數秒，取上清作模板。2）細胞培養(yǎng)物：收集病變細胞（勿凍融）懸液，10000rpm離心數秒，取細胞沉淀用適量sample Buffer 懸浮( ulTEN或生理鹽水懸浮，后同病料處理)，加入蛋白酶K至終濃度為100ug/ml，37℃1h，取出于沸水浴中變性10min，迅速置冰浴中，3000rpm離心數秒，取上清作模板。 Sample Buffer 終濃度KCL 50mM TrisHCl() 10mM 明膠 %Triton x100 %NP40 %Tween 20 %3) 質粒、病毒基因組DNA 沸水浴中變性10min，迅速置冰浴變性10min,迅速置冰浴中備用4） 料與鼻拭子（1） 勻漿器將病料組組織充分勻漿，用TEN緩沖液/生理鹽水按1:5稀釋（2） 收集懸液于離心管內，20℃凍融3次（3） 5000rpm5min（4） ，加入25ul的10%SDS（%，破外細胞組分）（終濃度為100ug/ml，消化去掉蛋白質，尤其是與DNA給合的組蛋白），混勻。（5） 50℃水浴過液（6） 用等體積（500ul）的苯酚：異戊醇、苯酚：氯仿：異戊醇、氯仿：異戊醇名抽提一次（去掉蛋白質和細胞膜組分）(7) 吸取上清，加倍量 無水乙醇、 NaAc于20℃沉淀30min，10000rpm 10min,（8） 沉淀用70%洗一次，真空干，用20ul ddH2O溶解，20℃保存?zhèn)溆米ⅲ嚎焖俸啽愕姆椒ǎ簷z測樣品可為純化DNA，亦可為細胞、組織、任何含病毒的樣品。一般無須提取DAN,直接取少量樣品（少于10ul）,高溫低滲液體（如水煮沸變性10分鐘后）溶解細胞制備摸板進行PCR。（三）病料中RNA提取1）取樣品（病料上清和雞胚液）125250200ul/樣，加入375750400ulRNA 提取裂解劑（TRIZO）(1∶3)—RNA ex Reagant Ls。混勻，渦懸，靜置510min。2）加入氯仿100200200ul（5∶1），手搖顛倒混勻，渦懸靜置510min。12000r/min離心1012min。3）取上清（先調槍為100ul，共取得300600ul）,加入等兩量的冰凍的異丙醇（吸去取異丙醇時平移槍頭哦，以免槍頭滴液），震蕩，混勻，室溫510min 或20℃30min(梢長無妨，如過夜)。置室溫溶解，4℃12000r/min 1012min,棄上清，吸干管口余液。4）加入適量冰凍75%乙醇或1ml 75% DEPC 水處理乙醇（750ml 無水乙醇+250DEPC水）洗滌，4℃750012000r/min 610min,棄上清。放置于平鋪的一張潔凈紙上，置超凈臺風干（約1020min）.5）加入101520ul的nucleasefree water 即DEPC水/(15ulTE ) /樣品，于3856℃水浴溶解約10min。（最佳70℃保存）.抽吸混勻,進行下一步實驗如RTPCR。Rnase:無處不在（如人是皮膚，故需作戴手套）及難于滅活（高壓滅菌和蛋白抑制劑不能使所有的RNA完全失活）。氯仿擦拭處理的用具，通?？上齊nase的活性。注意：PCR產物電泳中在目標帶前可可能出現(xiàn)引物二聚體的帶，而提質粒電泳在目標帶前可能出現(xiàn)RNA帶。準備物品：槍頭（200UL/1000UL）、槍（200UL/1000UL）、RNA抽提試劑、氯仿、異丙醇、75%乙醇（用無水乙醇配制如750ML無水乙醇+250DEPC水）等。PCR 模板的組成，欲擴增片段的長度及其不同的使用目的，對引物的要求是不一樣的；基因組DNA作模板時，由于其數量的膨大及結構復雜，除特異擴增外，易產生非特異擴增產物。總原則：提高擴增效力和特異性。（四）引物1．據DNA（DNAV）或CDNA（RNAV）的已發(fā)表的相關序列（病毒獨特的基因區(qū)域）來設計2．如為診斷用PCR，直接設計即可。3．如要酶切鑒定及克隆PCR產物，加入保護堿基和酶切位點5‘端（酶切位點的選擇要考慮序列內部自身已有的酶切位點，以免多點切割基因）。4．如要將目的序列（PCR產物）進行表達，加入保護堿基和酶切位點，起始子和終止子密碼，終止子TAA、TAG、TGA，起始子：ATG5．上游引物P1與序列5‘端序列相同（ATG），下游引物P2與序列3‘端互補且反向（TTA，CTA，TCA）。例：PRVEPO基因的克隆表達及序列分析PCR擴增：據國外報道的INFH株EPO基因的核苷酸序列，設計一對能包括EPO基因完整編碼區(qū)的特異性引物，上、下游引物分別設計了ECOR I和Xba I酶切為點。上游引物P1：5’——TTTGAATTCACCATGGGCTGCACGGTC——3’ 保護堿基 EcoR I 起始子 與Epo基因的核苷酸序列相同下游引物P2：—TTTTCTGAGTCAGTCGTCGTCGTGGGTG——3’ 保護堿基 Xba I 終止子 與Epo基因的核苷酸序列互補且反向EPO序列：5’——ATG GGCACGGTC——CACCCAGGACGACGACTGA （互補且反向）——3’引物設計原則：1）長度以1530nt為宜。增加長度并提高退火溫度，或選擇其他DNA序列合成新的特異引物可提高特異性。2）擴增片段在3001000bp為宜；RTPCR以500bp為宜；過短不易檢 測，過長不易擴增。優(yōu)化條件下，可擴增大于10Kb的片段。3）引物堿基組成隨機分布，避免嘌呤或嘧啶堆聚現(xiàn)象。G+C含量在4550%左右為宜；4）引物間尤其3’端不應有互補序列（4個堿基以上），以免形成二級結構；5）引物序列必須是被檢病毒特異的，在待擴增區(qū)域的兩邊均找出約20 個核苷酸（G+C）含量相近的合適序列。引物的堿基順序不與非擴增區(qū)域有同源性，要求用計算機進行補助檢索分析。6）原則上引物3’末端堿基與模版DNA一定要配對，3’末端堿基不選A（選T、C、G）。5’端可不與模版匹配。如PCR產物用于克隆，在5’端加上單一的酶切位點。可加錯配堿基，造成突變?？杉覣TG其使密碼。最多可游離10個bp。7）退火溫度（1525bp）Tm=4（G+C）+2（（A+T），一般1Kb以內，延伸1min足夠，多于1Kb，則延長時間，擴增10Kb，延伸15min。不管模版濃度多少，2030次循環(huán)較合理。8）PCR產物bp相差不大，如26bp與71bp，可用較高濃度的瓊脂糖1820g/L電泳分離，效果較好。PCR反應各組分濃度：1）MgCL2：Mg+過多則非特異擴增，過少則擴增效率較低?？深A實驗確定最佳Mg+濃度，終濃度一般為14mmol/L，工作濃度一般為25mmol/L.（3ul）2）引物：（100500nmol/L），（500ng）工作濃度一般為0 umol/L（1ul）。一般將5個OD值（33ug/OD）用400ulddH2O溶解，計算出其濃度，一般用500ul溶解50uM，分裝保存。取其一做5倍稀釋（一般為10uM）作為工作濃度近期保存使用。3）dNTP：終濃度一般為50200umol/L工作濃度一般為2mmol/L（1ul）、4）TaqE：，工作濃度一般為5U/uL（）5）變性劑：加入適量者如（二甲亞砜DMSO（50ul jia ）、5%甲酰胺、尿素等）可減少模版二級結構提高特異性尤在RTPCR加入5%甲酰胺提高特異性且cDNA產量大增。5）PCR的條件優(yōu)化：通過改變退火溫度或Mg+濃度來獲得真實的擴增結果對于復雜的 混合物，采用另一對嵌套引物可改善其特異性。循環(huán)參數：變性溫度9295 ，4060Sec， 退火溫度55 ，3050Sec， 延伸溫度72 ，6090Sec 循環(huán)次數2540 次注意：%（250：1）左右誤差，如克隆PCR片段，制備點突變或缺失突變株時，用具校對錯誤堿基功能的VentDNA聚合酶，合成誤差比TaqE：小得多。合成的引物進行PCR反應時無目的帶？1）引物和模板是否配對，同源性有多大？2）引物本身是否有立體結構，或兩條引物間是形成高次結構？3）PCR試劑/PCR儀是否正常？重新合成引物一試核酸定量：1mg./mldsDNAA260=20； ssDNA\RNAA260=25DNA純度：如dsDNAA260/A280=；如，則RNE污染，如，則蛋白質污染Ds DNA 10Kbp=106Dalton 1OD260nm=50ugSsDNA 10Kbp=106Dalton 1OD260nm=40ugRNA 10Kbp=106Dalton 1OD260nm=40ug1bp=660Dalton 1nt=330 Dalton蛋白質 BSA∶1OD260nm= （1mg/ml= OD260nm）氨基酸平均分子量 =110Dalton核酸蛋白質 1Kb RNA=37k Dalton 蛋白 10 kDalton 蛋白=273Base RNADEPC 水；%的DEPC（焦碳酸二乙酯），室溫（37℃）處理過夜，然后高壓滅菌，去除DEPC。測序樣品提供：：說明Vector名稱及結構情況，插入片段的長度及插入片段的酶切位點情況，提供35ug提純的質粒DNA （濃度大于200ng/ul）；說明菌體的種類及抗生素抗性的情況，所含載體的名稱及結構情況，插入片段的長度及插入片段的酶切位點情況。；提供切膠回收純化的PCR產物13ug （濃度大于100ng/ul）并說明PCR產物的長度，引物的具體序列等情況。小于100bp 不能測序。雙脫氧末端終止法測序：（樣品模板DNA準備）將待測病毒DNA 或cDNA（RNAV）重組到M13噬菌體或高拷貝質粒（如PUC系列），獲得病毒核酸片段的克隆?；蛴肞CR大量擴增待測片段。然后堿變性雙鏈DNA為單鏈DNA模板。按退火，延伸標記反應（加T7測序酶聚合酶，5分鐘），延伸終止（將延伸標記等份4份，加入4種ddNTP，使反應終止于所有可能發(fā)生的位置），終止反應（95100℃），電泳分離，放射自顯影條帶，讀出序列。序列數據庫：兩個最大的DNA數據庫為歐洲的EMBL和美國的GenBank也建成了蛋白質和RNA序列的數據庫序列分析：測序所得系列用計算機和軟件包來分析，如威勢康星大學的GCG軟件包，或PC程序如DNAstar，用Blast軟件對目的基因和參照基因進行DNA核苷酸序列和編碼氨基酸序列進行（同源性）分析。如兩基因比較，1有19處發(fā)生了點突變，兩者同