【正文】 在這里真誠的感謝他們在這里我要感謝老師的辛苦付出，感謝老師無微不至的關(guān)懷，有時候甚至犧牲自己的休息時間來幫助我們，使我們受益匪淺。在本篇論文之前的最初定題，研究資料的收集整理，到試驗方法的確定，老師都給了我極大的幫助。致 謝當整篇論文快完成之際，我有太多的感觸，回想大學這四年的時光，有很多美好的回憶，也有很多幫助過我，需要我感謝的人。結(jié) 論 ，好氧發(fā)酵還原糖增加量明顯大于厭氧發(fā)酵，也間接說明好氧發(fā)酵速率快于厭氧發(fā)酵速率。造成鉀上升的原因分析：在一個總體的發(fā)酵環(huán)境下，鉀的含量是沒有變化的，然而隨著發(fā)酵的進行，發(fā)酵底物被降解，生成CO2 H2O，NH3等氣體，使得發(fā)酵底物總質(zhì)量減少，所以鉀的含量上升。根據(jù)處理數(shù)據(jù)，作圖得出一下圖表：從圖319和圖320分析，水稻秸稈發(fā)酵過程中鉀的含量是逐步上升的。在發(fā)酵后期厭氧發(fā)酵相比好氧發(fā)酵總氮含量更高。在發(fā)酵16天的階段。總氮含量的減少一部分原因是被微生物所利用吸收，還有一部分原因是在發(fā)酵過程中，產(chǎn)生一含氮的氣體，比如氨氣等，所以總氮的含量在逐漸的減少。以總氮為指標，利用濃酸水解法測定，測量在發(fā)酵過程中其含量的變化。而烘干基對比，好氧發(fā)酵中總磷的含量分布曲線不規(guī)則，第12天總磷的含量急劇減少，造成這樣的原因可能是微生物大量利用磷來合成代謝。根據(jù)處理數(shù)據(jù)，作圖得出一下圖表：大豆好氧發(fā)酵鮮基總磷的含量是逐漸增加，然后穩(wěn)定。以總磷為指標，利用分光光度計測定，測量在發(fā)酵過程中其含量的變化。造成還原糖上升的原因是秸稈的降解將纖維素，半纖維素等大分子物質(zhì)轉(zhuǎn)化成小分子物質(zhì)，從而使還原糖量增加。比較大豆厭氧發(fā)酵，還原糖的含量先是增加到減小，第18天的時候，還原糖含量最小，然后逐漸的增加。以還原糖為指標，以3，5二硝基水楊酸水解法為測定方法，測量在發(fā)酵過程中其含量的變化。對比水稻秸稈發(fā)酵，兩者的總糖含量都是隨著發(fā)酵的進行逐漸減小的。以下是數(shù)據(jù)分析： 發(fā)酵過程對總糖的分析以總糖為指標，以3，5二硝基水楊酸水解法為測定方法，測量在發(fā)酵過程中其含量的變化?？偺呛瓦€原糖，總氮，總磷的測定能反應出秸稈在發(fā)酵過程中大分子物質(zhì)轉(zhuǎn)化成小分子物質(zhì)這一過程。造成鉀上升的原因分析：在一個總體的發(fā)酵環(huán)境下，鉀的含量是沒有變化的，然而隨著發(fā)酵的進行，發(fā)酵底物被降解，生成CO2 ，H2O，NH3等氣體，使得發(fā)酵底物總質(zhì)量減少，所以鉀的含量上升。得出以下圖表：根據(jù)處理數(shù)據(jù)，作圖得出一下曲線：從圖317和圖318分析，水稻秸稈發(fā)酵過程中鉀的含量是逐步上升的。在發(fā)酵后期厭氧發(fā)酵相比好氧發(fā)酵總氮含量更高。在發(fā)酵16天的階段?？偟康臏p少一部分原因是被微生物所利用吸收，還有一部分原因是在發(fā)酵過程中，產(chǎn)生一含氮的氣體，比如氨氣等，所以總氮的含量在逐漸的減少。得出以上圖表。所以磷的含量逐漸上升。所以磷的含量開始是減少，在發(fā)酵進行時，秸稈在微生物分解的作用下，使的磷的含量上升。無論是在好氧發(fā)酵還是厭氧發(fā)酵都是從先減小后增加，最后減小直至穩(wěn)定的過程。厭氧發(fā)酵中則是發(fā)酵進行到12天有個凸點，總磷的含量有所增加。得出以上圖表。而到后期還原糖含量下降的原因是當秸稈降解到一定程度，還原糖含量增多，微生物開始利用還原糖來作為營養(yǎng)原料，所以含量下降。所以可以預計厭氧發(fā)酵中還原糖已經(jīng)達到最大值，而后期還原糖含量就呈減小的趨勢。預計到后期的發(fā)酵，還原糖的含量達到最大值后會逐漸的減少。而在同期的水稻厭氧發(fā)酵中，還原糖的含量是穩(wěn)定的逐步增加的。 發(fā)酵過程中對還原糖數(shù)據(jù)的分析以還原糖為指標，以3，5二硝基水楊酸水解法為測定方法，測量在發(fā)酵過程中其含量的變化。隨著發(fā)酵的進行，微生物在酶的活性條件下，纖維素、半纖維素等被微生物利用分解，總糖含量也隨之下降。從圖中可以看出在發(fā)酵過程中不論好氧發(fā)酵和厭氧發(fā)酵，總糖含量都是呈現(xiàn)逐漸下降的趨勢。以下總糖的數(shù)據(jù)分析：根據(jù)處理數(shù)據(jù)，作圖得出一下曲線：以總糖為指標，以3，5二硝基水楊酸水解法為測定方法，測量在發(fā)酵過程中其含量的變化。 其余操作均與制作葡萄糖標準曲線時相同[4]。精確吸取10ml定容過的水解液，移入另一100ml的容量瓶中，以水稀釋定容，混勻，作為總糖待測液。離心或過濾，用20ml 蒸餾水洗殘渣，再離心或過濾，將兩次離心的上清液或濾液全部收集在100ml的容量瓶中，用蒸餾水定容至刻度，混勻，作為還原糖待測液。以吸光度為縱坐標，葡萄糖毫克數(shù)為橫坐標，繪制標準曲線。 管號0123456葡萄糖標準液0蒸餾水3，5二硝基水楊酸將各管搖勻，在沸水浴中加熱5min ，取出后立即冷卻至室溫，再以蒸餾水定容25ml混勻。同樣取空白試驗，按上述順序比色，測出空白試驗吸光度值，計算兩值之差，根據(jù)標準曲線計算出含磷量[5]。30min后于700nm波長比色。L1NaOH溶液直至溶液變成微黃色。2 測定將過濾消煮液靜置過夜。30min后于700nm波長比色。各瓶比色液濃度分別為0、L1NaOH溶液直至溶液變成微黃色。 總磷測定1. 制作標準曲線準確吸取5μg記錄所用硫酸標準溶液的體積。L1氫氧化鈉溶液，蒸餾約5min后停止。L1硼酸—指示劑混合液，將三角瓶置于定氮儀冷凝器的承接管下，管口插入硼酸溶液中，以免吸收不完全。2測定 吸取過濾液15mL至消化管內(nèi)，再加入約60mL水，搖勻，置于定氮儀上。用定量濾紙過濾于錐形瓶中，封口保存。將消煮液用水定容至100mL。再加熱至微沸10到20min，稍冷后再加熱5到10min，以除盡過剩的H2O2。當溶液全部呈棕黑色時，從消化爐上取下開氏瓶，稍冷，逐漸加入300g 試驗器材表22 主要器材試 驗 器 材數(shù) 目凱 氏 定 氮 儀1消 化 爐1分 光 光 度 計1水 浴 鍋1電 子 天 平1溫 度 計125ml 比 色 管25100ml三 角 瓶30100ml容 量 瓶2650ml容 量 瓶26消 化 瓶16滴 定 瓶4 試驗藥劑表23 試驗主要藥劑配制試劑 所需試劑硼酸指示劑混合液 硼酸、溴甲酚綠、甲基紅、乙醇甲基紅指示劑 甲基紅、乙醇酚酞