【正文】 統(tǒng)，重要參數(shù)設定如下：通道模式張力；采集頻率800Hz；掃描速度500ms/div；靈敏度5mv；時間常數(shù)直流；濾波常數(shù)30Hz；50Hz陷波開。（2）實驗兔以犬眠寶靜脈注射麻醉，仰臥固定于手術臺上，剪去頸部與劍突腹面的被毛，切開頸部皮膚，分離出氣管與兩側迷走神經；切開氣管，插入氣管套管，用棉線結扎，并在兩側迷走神經下各穿一條絲線，扎一松結備用。5．教學方式以實驗為主，課堂講授為輔的教學方法，同時配合錄象教學。6．考核要求學會氣管套管技術。7．實驗報告要求（1）血液中CO2增多或缺O(jiān)2時，呼吸運動有何改變？（課后思考題）（2）雙側切斷迷走神經以后，呼吸運動的變化說明什么問題？（課后思考題）實驗九 離體腸段運動的描記1．本次實驗的目的和要求觀察在離體情況下腸的運動情況以及某些因素對腸運動的影響。2．實驗內容或原理腸平滑肌具有自動節(jié)律性收縮的特性，并且受腸壁內神經叢與外來植物性神經的支配。離體腸段雖然失去外來神經的支配，但在適宜的條件下，仍能保持平滑肌收縮的特性及腸壁神經叢的作用。離體腸段運動的裝置，還可以用來研究各種化學因素對平滑肌的影響。3．需用的儀器或試劑等兔，麥氏浴皿，燒杯，酒精燈，溫度計，三腳鐵架，萬能支架，絲線，%腎上腺素，%乙酰膽堿，臺氏液，BL420生理系統(tǒng)。4．實驗步驟（1）連接好張力感受器，開機進入BL420系統(tǒng)，重要參數(shù)設定如下：通道模式生物電；采集頻率400Hz；掃描速度2s/div；靈敏度5mv；時間常數(shù)直流；濾波常數(shù)10Hz；50Hz陷波開。（2）實驗兔一只，以手抓住后腿使頭下垂，用木棒猛擊后腦部致死。然后沿著腹白線迅速剖開腹腔，取出全部小腸放入3738℃臺氏液中，充分洗去腸內容物，切取34cm的腸段（十二指腸或空腸）。后用縫線在腸壁兩端各穿上一條絲線，一端固定于麥氏浴皿的通氣管上，另一端與張力感受器相連。麥氏浴皿內的溫度為3839℃，并不斷地通氣至臺氏液中去。離體腸段的運動有時不立即開始，可能要經過1030min才開始運動。5．教學方式以實驗為主，課堂講授為輔的教學方法，同時配合錄象教學。6．考核要求觀察在離體情況下腸的運動情況以及某些因素對腸運動的影響。7．實驗報告要求（1）為什么加入各種藥物會引起離體腸段運動的變化？（課后思考題）（2）加入乙酰膽堿后再加入阿托品，腸段活動受到抑制，為什么？（課后思考題）實驗十 循環(huán)、呼吸、泌尿綜合實驗1．本次實驗的目的和要求通過觀察動物在整體情況下，各種理化刺激引起循環(huán)、呼吸、泌尿等功能的適應性改變，加深對機體在整體狀態(tài)下的整合機制的認識。2．實驗內容或原理動物機體總是以整體的形式存在，不僅以整體的形式與環(huán)境保持密切的聯(lián)系，而且可通過神經體液調節(jié)機制不斷改變和協(xié)調各器官系統(tǒng)（如循環(huán)、呼吸和泌尿等系統(tǒng)）的活動，以適應內環(huán)境的變化，維持新陳代謝正常進行。3．需用的儀器或試劑等健康成年家兔、20%氨基甲酸乙酯、%肝素生理鹽水、38℃生理鹽水、1：10000去甲腎上腺素、1：10000乙酰膽堿、呋塞米（速尿）、神經垂體素、20%葡萄糖溶液、生理鹽水、3%乳酸、5%NaHCOCO2氣體、鈉石灰、手術器械一套、兔手術臺、動脈夾、注射器（1mL、5 mL、50 mL）計算機生物信號采集處理系統(tǒng)（刺激器、計滴器）、刺激電極、壓力換能器、氣管插管、橡皮管，球囊、動脈插管，輸尿管插管（或膀胱套管）、刻度試管、金屬鉤、鐵支架、絲線4．實驗步驟（1）麻醉固定:動物稱重后，自耳緣靜脈緩慢注入20%氨基酸乙酯溶液（）,麻醉后仰臥固定于兔手術臺。（2）頸部手術:① 行常規(guī)氣管插管術；② 行右側頸總動脈插管術，并連接壓力換能器，記錄血壓。（3）上腹部手術:上腹部剪毛，切開胸骨劍突部位的皮膚，沿腹白線切開長約2cm的切口，小心分離暴露劍突軟骨及骨柄，用金冠剪剪斷劍骨柄，將縛有長線的金屬鉤鉤于劍突中間部位，線的另一端連張力換能器，記錄呼吸（見呼吸實驗）。（4）下腹部手術:下腹部剪毛，沿恥骨上緣正中線切開皮膚約4cm，剪開腹壁（不要傷及腹腔內器官），在腹腔底部找出兩側輸尿管，實施輸尿管插管術（也可作膀胱插管，暴露膀胱行膀胱漏斗結扎術）分別將壓力換能器、張力換能器和記滴器與計算機生物信號采集處理系統(tǒng)相連，選定各信號輸入的通道，調整好波寬、增益、刺激強度、時間常數(shù)等實驗參數(shù)，調整動脈血壓波形、呼吸波形和尿滴，以便獲得更良好的觀察效果。（1）記錄一段正常的動脈血壓曲線、呼吸曲線和尿量。（2）吸入CO2氣體:將裝有CO2氣囊（可用呼出氣體）的管口對準氣管插管，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（3）缺氧:將氣管插管的一側管與裝有鈉石灰的廣口瓶相連，廣口瓶的另一開口與盛有一定量的空氣氣囊相連，此時動物呼出的CO2可被鈉石灰吸收。隨著呼吸的進行，氣囊里的O2逐漸減少，可造成缺氧。觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（4）改變血液的酸堿度① 由耳緣靜脈較快的注入3%乳酸2mL，觀察H+增多時對血壓、呼吸及尿量的影響。② 由耳緣靜脈較快的注入5% NaHCO3 6ml，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（5）夾閉頸總動脈:待血壓穩(wěn)定后，用動脈夾夾住左側頸總動脈，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。出現(xiàn)明顯變化后去除夾閉。（6）電刺激迷走神經和減壓神經:將保護電極與刺激輸出線（通道）連接，待血壓恢復后，分別將右側迷走神經、減壓神經輕輕搭在保護電極上，選擇刺激強度6V，刺激頻率40～,刺激15～20s，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（7）靜脈注射生理鹽水:由耳緣靜脈快速注射38℃生理鹽水30mL，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（8）靜脈注射利尿藥:待血壓恢復后， mL，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（9）靜脈注射去甲腎上腺素（NE）:待血壓恢復后，由耳緣靜脈注射1：,觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（10）靜脈注射葡萄糖:待血壓恢復后，由耳緣靜脈注射20%葡萄糖5mL，觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（11）靜脈注射乙酰膽堿（ACh）:待血壓恢復后，由耳緣靜脈注射1：, 觀察血壓、呼吸及尿量的變化。（12）動脈放血:待血壓恢復后，調節(jié)三通管使動脈插管與50mL注射器（內有肝素）相通，放血50mL（放血后立即用肝素生理鹽水將插管內血液沖回兔體內，以防凝血），觀察血壓、呼吸及尿量的變化。5．教學方式以實驗為主，課堂講授為輔的教學方法，同時配合錄象教學。6．考核要求通過觀察動物在整體情況下，各種理化刺激引起循環(huán)、呼吸、泌尿等功能的適應性改變，加深對機體在整體狀態(tài)下的整合機制的認識。7．實驗報告要求實 驗因 素血壓／mmHg呼吸頻率/（次min1）幅度尿量/（滴min1）前 后 升降前 后 增 減前 后 增 減+增加 血液HCO3增加 刺激減壓神經不同抗心肌損傷注射液對蟾蜍實驗性急性心肌損傷的影響實驗目的本實驗通過蟾蜍實驗性急性心肌損傷模型，觀察①與②注射液對實驗性急性心肌損傷的保護作用。 2 材料與方法 2．1實驗材料：蟾蜍，共30只，體重在(40177。5)g，①、②注射液、犬眠寶，BL420生物信號記錄系統(tǒng)。 2．2藥物：鹽酸維拉帕米、去乙酰毛苷注射液、鹽酸異丙腎上腺素、鹽酸多巴胺、重酒石酸去甲腎上腺素、鹽酸利多卡因2．3實驗方法：心肌損傷模型：20％氨基甲酸乙酯，／kg，皮下淋巴囊注射麻醉，動物麻醉后背位固定于蛙板上，開胸 、剪 開心包膜，連接記錄電極至生物信號系統(tǒng) ，分別描記實驗前 Ⅱ導聯(lián)心電圖作為對照，然后輕輕托起心尖部，用小剪 刀斜向剪一長約 1 mm的切口(剪時切勿穿破心室壁 )，損傷后分別記錄 1，3，5 min II導聯(lián)心電圖，觀察 sT段和 T波電壓變化。 2．4給藥 給藥組于蟾蜍下頜淋巴囊分別給予①注射液 (／kg)，記錄正常心電圖后立即按上述方法分別記錄 1，3，5 rainⅡ導聯(lián)心電圖，觀察，ST段和 T波電壓變化。10 min后注射②再分別記錄 1，3，5 minⅡ導聯(lián)心電圖。2．5統(tǒng)計學方法結果：注射液的功能： ：結果分析：六、實驗教材及主要參考資料楊秀平主編，《動物生理學實驗》高等教育出版社，2004年19 / 1