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正文內(nèi)容

生物化學實驗報告-蛋白質(zhì)分子量測定--凝膠層析法等(參考版)

2025-01-21 22:45本頁面
  

【正文】 20。SOD純化倍數(shù)逐漸增加,最后達到約10倍,但是回收率卻只有21%,偏低。 本實驗純化過程中,蛋白質(zhì)含量、酶總活性逐漸降低,比活性逐漸增加。里面含有雜質(zhì),所以吸光值較大在標準曲線上所對應的蛋白質(zhì)含量就過高,所以樣品1的蛋白質(zhì)含量不準確。解決方法,可以多次測量取平均值,再舍去離標準曲線較遠的點,使標準曲線兩邊的點數(shù)目盡量一樣多,再繪制標準曲線,這樣就可以減少偶然誤差。酶活力測定中三個不同量樣液的光密度值見下表:表 4時間(min)1234樣1(50μl)樣2(100μl)樣2(100μl)計算(方法同1)得: A1=;A2=;A3=。蛋白質(zhì)含量計算根據(jù)所測樣品提取液的光密度,在標準曲線上查得相應的蛋白質(zhì)含量,計算其濃度。以牛血清蛋白含量(ug)為橫坐標,光密度值為縱坐標,繪出標準曲線。注意各管振蕩程度盡量一致。(2) 酶活力測定操作與(1)基本一致,加入鄰苯三酚前,蒸餾水則減少相應的體積,同理測其光密度值,計算加酶后鄰苯三酚自氧化率。C水浴保溫20min,取出后立即加入25176。將沉淀物用等體積的丙酮溶液洗二次,離心收集沉淀,自然干燥既得淡綠色成品,按1mg/ml溶于蒸餾水,備用。C恒溫水浴中進行熱處理,15min后取出迅速冷卻至室溫,4000r/m,5min,除沉淀,得淺黃色粗酶液,留樣2ml。%,均勻呈暗紅色,再繼續(xù)攪拌15min,4000r/m,10min,去變性蛋白沉淀物,得上層液,留樣2ml。三、 操作步驟 SOD的提?。?) 取新鮮豬血20ml(:1的比例加入ACD抗凝劑),4000r/m,10min,去上層血漿,取下層紅血球粘稠液,并量其體積,%NaCl溶液清洗,4000r/m,10min,棄上清液,得洗凈的紅血球濃稠液。用“負”顯色法,核黃素經(jīng)光照所產(chǎn)生的活性氧O2(氧自由基)能使氯化硝基四氮唑藍(NBT)由黃色的氧化型轉(zhuǎn)化為藍色的還原型。在一定的范圍內(nèi),溶液在595nm波長下光密度與蛋白質(zhì)含量成正比,可用比色法測定,在測定范圍11000ug。樣品中蛋白質(zhì)含量用考馬斯亮藍G250法測定。酶活力測定可以用一下方法:鄰苯三酚自氧化法、黃嘌呤氧化酶法、NBT光還原法、化學發(fā)光法、腎上腺素自氧化法、亞硝酸法等。SOD將O2歧化為H2O2,而過氧化氫酶、谷胱甘肽過氧化酶可催化過氧化氫分解,在機體內(nèi)形成一套解毒系統(tǒng),對機體起防護作用。在某些疾病過程中會產(chǎn)生大量的O2。在一些正常生理過程中會形成一些O2。機體內(nèi)O2的過量和不足均對機體不利,SOD對過量的O2的及時清除保證了機體內(nèi)O2的含量的相對平衡。CuZnSOD為二聚體,呈藍綠色;MnSOD呈紫色;FeSOD呈黃褐色。SOD是一種酸性蛋白,對熱、PH和蛋白酶的水解較一般酶穩(wěn)定。實驗三 豬血中超氧化物歧化酶(SOD)的分離純化及活力測定 一、實驗目的通過本次實驗熟悉掌握超氧化物歧化酶(SOD)的分離純化方以及SOD活力的測定。(5)脫色將染色液倒回瓶內(nèi),加入漂洗液洗,漂洗兩次,每次12小時,照相保存。待溴酚藍走出分離膠后30分鐘停止電泳,取出玻璃板,剝膠染色。表1 凝膠的制備試劑配方聚丙烯酰胺凝膠組成分離膠(10%)濃縮膠(3%)30%AcrBis(ml)H2O(含SDS、TEMED)(ml) TrisHCL(含SDS、TEMED)(ml)10%AP(ul)0100075(3)加樣及電泳 待凝膠聚合完全后,拔掉電泳梳子,然后將電泳槽注滿電泳緩沖液,取適量上清液加樣,在標準泳道點是上高分子標準蛋白質(zhì)溶液。在組裝好的電泳槽中先制分離膠,待分離膠聚合后,倒掉乙醇溶液,再灌濃縮膠,灌好濃縮膠后迅速插入樣
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