【正文】 。 ? （ 3）采用 RNase H一莫洛尼氏鼠白血 .病毒 (MMLV)反轉(zhuǎn)錄酶或選擇嗜熱 DNA聚合酶可能在高溫 h (60 度 70度 )有效地逆轉(zhuǎn)錄 mRNA，從而消除了 5‘端由于高CC含量導(dǎo)致的 mRNA 二級結(jié)構(gòu)對逆轉(zhuǎn)錄的影響 。N=A/G/C/T】 ，使引物定位在poly(A)尾的起始點，從而消除了在合成第一條 cDNA鏈時 oligo(dT)與 poly(A)尾的任何部位的結(jié)合所帶來的影響 。 DNA片段擴增出來。 利用 mRNA的 3’末端的 poly(A)尾巴作為一個引物結(jié)合位點，以連有 SMART寡核營酸序列通用接頭引物的 Oligo(dT)30MN作為鎖定引物反轉(zhuǎn)錄合成標(biāo)準(zhǔn)第一鏈 cDNA。最終，從 2個有相互重疊序列的 339。利用該反轉(zhuǎn)錄酶具有的末端轉(zhuǎn)移酶活性，在反轉(zhuǎn)錄達(dá)到第一鏈的 5‘末端時自動加上 3一 5個(dC)殘基，退火后 (dC)殘基與含有 SMART寡核苷酸序列 Oliogo(dG)通用接頭引物配對后，轉(zhuǎn)換為以 SMART序列為模板繼續(xù)延伸而連上通用接頭(figure 2 )。 In situ PCR 原位 PCR就是在組織細(xì)胞里進(jìn)行 PCR反應(yīng)，它結(jié)合了具有細(xì)胞定位能力的原位雜交和高度特異敏感的 PCR技術(shù)的優(yōu)點，是細(xì)胞學(xué)科研與臨床診斷領(lǐng)域里的一項有較大潛力的新技術(shù) . 原位 PCR是 Hasse等于 1990年建立的，實驗用的標(biāo)本是新鮮組織、石蠟包埋組織、脫落細(xì)胞、血細(xì)胞等 .其基本方法為①固定組織或細(xì)胞 :將組織細(xì)胞固定于預(yù)先用四氟乙烯包被的玻片上，并用多聚甲醛處理，再滅活除去細(xì)胞內(nèi)源性過氧化物酶 .② 蛋白酶 K消化處理 :用 60ug/ml的蛋白酶 K將固定好的組織細(xì)胞片55℃ 消化處理 2h后， 96℃ 2min以滅活蛋白酶 K. ③ PCR擴增 :在組織細(xì)胞片上，加 PCR反應(yīng)液，覆蓋并加液體石蠟后，直接放在擴增儀的金屬板上，進(jìn)行 PCR循環(huán)擴增 .有的基因擴增儀帶有專門用于原位 PCR的裝置 .④ 雜交 :PCR擴增結(jié)束后，用標(biāo)記的寡核苷酸探針進(jìn)行原位雜交 .⑤ 顯微鏡觀察結(jié)果 . ? 原位 PCR既能分辯鑒定帶有靶序列的細(xì)胞，又能標(biāo)出靶序列在細(xì)胞內(nèi)的位置，于分子和細(xì)胞水平上研究疾病的發(fā)病機理和臨床過程及病理的轉(zhuǎn)歸有重大的實用價值 .其特異性和敏感性高于一般的PCR. 原位 PCR 連接酶鏈反應(yīng) (Ligase chain reaction， LCR)，是一種新的 DNA體外擴增和檢測技術(shù)，主要用于點突變的研究及靶基因的擴增 . 連接酶鏈反應(yīng)是 Backman1997年為檢出靶基因序列中的點突變而設(shè)計發(fā)明，并申報了專利 .1988年 Landegren也進(jìn)行了該項研究 .1988年 Backman等又因分離熱穩(wěn)定的連接酶，而申報專利， 1991年 Backman和 Barany分別用耐熱 DNA連接酶進(jìn)行了 LCR試驗 .耐熱 DNA連接酶可以在熱循環(huán)中保持活性，提高連接反應(yīng)的特異性，排除了背景擴增和免除了不斷補充酶的繁瑣程序 . ?連接酶鏈反應(yīng) (Ligase chain reaction， LCR) LCR的基本原理為利用 DNA連接酶 .特異地將雙鏈 DNA片段連接，經(jīng)變性 退火 連接三步驟反復(fù)循環(huán)，從而使靶基因序列大量擴增 .其程序為 :在模 DNA、 DNA連接酶、寡核苷酸引物以及相應(yīng)的反應(yīng)條件下，首先加熱至一定溫度下 (94～95℃) 使 DNA變性，雙鏈打開，然后降溫退火 (65℃) ，引物與之互補的模板 DNA結(jié)合并留下一缺口，如果與靶序列雜交的相鄰的寡核苷酸引物與靶序列完全互補， DNA連接酶即可連接封閉這一缺口，則 LCR反應(yīng)的三步驟 (變性 退火 連接 )就能反復(fù)進(jìn)行，每次連接反應(yīng)的產(chǎn)物又可在下一輪反應(yīng)中作模板，使更多的寡核苷酸被連接與擴增 .若連接處的靶序列有點突變，引物不能與靶序列精確結(jié)合，缺口附近核苷酸的空間結(jié)構(gòu)發(fā)生變化，連接反應(yīng)不能進(jìn)行，也就不能形成連接產(chǎn)物 . 連接酶鏈反應(yīng) (Ligase chain reaction， LCR) Ligase chain reaction (LCR) Ligase chain reaction (LCR) Denaturation 70C Annealing and Ligation 40C Denaturation 70C Ligase chain reaction (LCR) LCR的引物是兩對分別互補的引物，引物長度為20～ 26個，以保證引物與靶序列的特異性結(jié)合，LCR識別點突變的特異性高于 PCR，其特異性首先取決于引物與模板的特異性結(jié)合，其次是耐熱連接酶的特異性 .LCR連接反應(yīng)溫度接近寡苷酸的解鏈溫度(Tm)，因而識別單核苷酸錯配的特異性極高 . LCR的擴增效率與 PCR相當(dāng)，用耐熱連接酶做LCR只用兩個溫度循環(huán)， 94℃min 變性和 65℃ 復(fù)性并連接，循環(huán) 30次左右 .其產(chǎn)物的檢測也較方便靈敏 .目前該方法主要用點突變的研究與檢測、微生物病原體的檢測及定向誘變等，還可用于單堿基遺傳病多態(tài)性及單堿基遺傳病的產(chǎn)物診斷，微生物的種型鑒定，癌基因的點突變研究等 . Ligase chain reaction (LCR) RACE cDNA末端快速擴增技術(shù) (rapid amplification of cDNA ends, RACE)是一種基于 PCR從低豐度的轉(zhuǎn)錄本中快速擴增 cDNA的 539。 不對稱 PCR— ssDNA產(chǎn)物量 ? 解決不對稱 PCR反應(yīng)擴增效率低的方法： ? 增加 PCR循環(huán)的次數(shù) ? 在最后五個循環(huán)中多加 Tab聚合 酶 (2U) ? 試一下相反的不對稱引物比率。取10%的反應(yīng)產(chǎn)物，經(jīng)過瓊脂 糖電泳分離后，放射自顯影。 一般對 100μl PCR反應(yīng)體系而言，當(dāng)引物比率為 50pmo:，經(jīng)過 30個循環(huán) 后，大約可產(chǎn)生 13pmol的 ssDNA。 不對稱 PCR反應(yīng)過程：一般來說，在不對稱 PCR反應(yīng)中，在 開始的 2025個循環(huán)中，兩個比率不對稱的擴增引物產(chǎn)生出雙鏈 DNA，當(dāng)限量的那個引 物耗光后，隨后的 510個循環(huán)就產(chǎn)生出 ssDNA。這兩種引物分別稱為限制性引物與非限制性引物；其最佳比例一般為 1： 50~1： 100，關(guān)鍵是限制引物的絕對量。 ?選擇多種限制性內(nèi)切酶，基本準(zhǔn)則是選擇不能在非酶切位點切斷靶 DNA的酶。這時選擇的引物雖然與核心 DNA兩末端序列互補，但引物 3’端是相互反向的。 反向 PCR（ Inverse PCR） 反向 PCR的目的在于擴增一段已知序列旁側(cè)的 DNA，也就是說這一反應(yīng)體系不是在一對引物之間而是在引物外側(cè)合成DNA。套式引物 PCR減少了引物非特異性退火，從而增加了特異性擴增，提高了擴增效率。端最后 3個堿基的退火足以在錯誤位點起始 PCR；次黃嘌呤可以同所有的堿基配對，降低引物的退火溫度。 簡并度越低，產(chǎn)物特異性越強。兩步法則是將 RT和 PCR分別進(jìn)行，這樣使得兩個反應(yīng)充分發(fā)揮各自的特點，更為靈活而且嚴(yán)謹(jǐn)，適合那些 GC含量、二級結(jié)構(gòu)嚴(yán)重的模板或者是未知模板，以及多個基因的 RTPCR。該法可用于低豐度 mRNA的 cDNA文庫的構(gòu)建及特異 cDNA的克隆，并有