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正文內(nèi)容

發(fā)酵經(jīng)濟(jì)學(xué)(參考版)

2024-08-24 09:46本頁面
  

【正文】 測定 于甲、乙兩支比色管中 (50ml),分別加入 20%可溶性淀粉溶液 25m1 及 的醋酸 醋酸鈉緩沖液 5ml,搖勻, 40℃的恒溫水浴中預(yù)熱 (510min)。 2%可溶性淀粉 稱取可溶性淀粉 2g,然后用少量蒸餾水調(diào)勻,徐徐傾入巳沸的蒸餾水中,煮沸至透明,冷卻定容至 l00ml,此溶液需當(dāng)天配制。 1mol/L 硫酸溶液 量取濃硫酸 ,慢慢加入于 80 m1 蒸餾水中,冷卻后定容至 l00ml,搖勻。 吸取 10ml 待標(biāo)定的碘液放入 250m1 碘量瓶中,以 黃色時,加入 1%淀粉 指示劑 l2 滴,繼續(xù)滴定至無色為終點。 稱取碘化鉀 (K1)36g,溶解在 100m1 蒸餾水中,再加入碘 (I2) 溶解,定容至 1000ml 貯存于棕色瓶中。根據(jù)本液的消耗量與重鉻酸鉀的用量,計算硫代硫酸鈉的當(dāng)量濃度。并將滴定的結(jié)果用空白試驗校正。輕輕振搖使溶解,加 1mol/L 硫酸溶液 40m1搖勻,密塞。 (2)標(biāo)定:取在 120℃下干燥至恒重的標(biāo)準(zhǔn)重鉻酸鉀 .精密稱量。貯于棕色瓶中密封保存,配制后應(yīng)放置一星期標(biāo)定使用。 (1)配制:稱取硫 代硫酸鈉 (Na2S2O3178。 3H2O) 和冰醋酸 (CH3COOH),用蒸餾水溶解,定容至 1000m1。 6 參考書 ( 1)鄔顯章,《酶的工業(yè)生產(chǎn)技術(shù)》,吉林科學(xué)技術(shù)出版社, 1988 年 實驗 五 糖化酶的測定方法 1 原理 糖化型淀粉酶(即淀粉α 1, 4葡萄糖苷酶)有催化淀粉水解的作用,從淀粉分子非還原性末端開始,分解α 1, 4糖苷鍵生成葡萄糖,反應(yīng)生成的葡萄糖用次碘酸鉀法定量測定,以表示糖化性淀粉酶的活力。 D:平行試驗管的平均光密度 4:試管中反應(yīng)液總體積 (毫升 ) 10:反應(yīng) 10 分鐘 N:稀釋倍數(shù) W:曲的稱取量 (克 ) 5 說明 ( 1)對于同一臺分光光度計與同一批福林 酚試劑,其工作曲線 K 值可以沿用,當(dāng)另配福林 酚試劑時,工作曲線應(yīng)重作。 WNDOK 1104 ??????蛋白酶活力 式中 K:標(biāo)準(zhǔn)曲線中 O178。 見空白管為對照,在 680 納米波長下測光密度,取其平均值。 空白管中先加入 三氯乙酸溶液,再加 lml2%酪蛋白溶液, 15min 后用濾紙過濾。立即加入 2ml 三氯 乙酸溶液, l5min 后用濾紙過濾。 測定 取四支試管,分別加入 1ml 稀釋酶液,其中一支為空白管,三支為平行試驗管。 酶液的制備 準(zhǔn)確稱取蛋白酶固態(tài)發(fā)酵的濕曲 2g,用 10~20ml 蒸餾水, 30℃浸提半小時,用濾紙過濾。一般測 3 次,取平均值. 以吸光度為縱座標(biāo)。 3 操作步驟 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 ( 1)按表配制各種不同濃度的酪氨酸溶液 試劑( ml) 管 號 1 2 3 4 5 6 蒸餾水 10 8 6 4 2 0 100μ g/m1 酪氨酸 0 2 4 6 8 10 酪氨酸最終濃度(μ g/m1) 0 20 40 60 80 100 (2)測定步驟 另取 6 支試管按上表編號分別吸取不同濃度的酪氨酸 1ml,各加入 酸鈉 5m1,再加入已稀釋的福林試劑 1m1。 100μ g/m1 酪氨酸溶液 精確稱取在 l05℃烘箱中烘至恒重的酪氨酸 ,逐步加入 (HCl)使溶解,加蒸溜水定容至 100m1,其濃度為 1000μ g/m1。 配制酪蛋白溶液定容時,若泡沫過多,則可加 1~2 滴酒精消泡。配制后應(yīng)及時使用或放入冰箱內(nèi)保存。 取 A 液 16ml 與 B 液 1ml 稀釋 1 倍即成 。 A 液:稱取 %乳酸加蒸餾水定容至 1000ml。 (TCA)溶液 稱取三氯醋酸 ,定容至 1000ml。細(xì)菌漏斗 4~5號過濾,置于棕色瓶中保存。再煮沸除去之。 2H2O)25g,水 700ml, 85%磷酸 50m1,濃鹽酸 1000ml,文火回流10h.加入硫酸鋰 (Li2SO4)150g,蒸溜水 50m1,混勻取去冷凝器,加入幾滴液體溴,再煮沸 l5min,以驅(qū)逐殘溴及除去顏色,溶液應(yīng)呈黃色而非綠色。 2 試劑 福林試劑 于 2020ml 磨口回流裝置內(nèi)加入鎢酸鈉 (Na2WO4 178。藍(lán)色反應(yīng)的強(qiáng)弱,同三氯醋酸中蛋白水解產(chǎn)物的多少成正比而水解產(chǎn)物的量又是同酶活力成正比例關(guān)系。 7 參考書 ( 1)天津輕工業(yè)學(xué)院等,《工業(yè)發(fā)酵分析》,輕工業(yè)出版社, 1980 年 實驗四 蛋白酶活力的測定方法 1 原理 根據(jù)福林試劑 (磷鉬酸與磷鎢酸混合物 ),在堿性情況下極不穩(wěn)定,可被酞類化合物還原而呈藍(lán)色反應(yīng) (鉬藍(lán)和鎢藍(lán)的混合物 ),由于蛋白質(zhì)分子中含有酚基的氨基酸 (如酪氨酸、色氨酸及苯丙氦酸等 ),它使蛋白質(zhì)或其水解產(chǎn)物也呈這個反應(yīng),于是就可利用這個原理來測定蛋白酶活力的強(qiáng)弱, 即以酪蛋白為作用底物,在一定 pH 與溫度下,同酶液反應(yīng),經(jīng)一定時間后,加入三氯醋酸,以終止酶反應(yīng),并使殘余的酪蛋白質(zhì)沉淀,同水解產(chǎn)物分開,經(jīng)過濾后取濾液 (即含蛋白水解產(chǎn)物的三氯醋酸液 )。 (5)斐林溶液與還原糖之間的反應(yīng)因受溶液堿性、加熱濕度和時間以及副反應(yīng)等影響,而沒有嚴(yán)格的定量關(guān)系,不能由當(dāng)量定律來求出試樣中還原糖的含量,只熊根據(jù)在相同實驗條件下消耗相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)還原糖量或由嚴(yán)格相同的實驗條件下得出的還原糖檢索表上 查得相應(yīng)的還原糖量來進(jìn)行計算。 (3)樣品液中還原糖濃度不宜過高或過低,根據(jù)預(yù)備試驗結(jié)果,應(yīng)將樣品液稀釋至還原糖的含量在 1%左右為宜。 (2)滴定過程應(yīng)該始終保持在微沸狀態(tài)下進(jìn)行。 5 計算 %1001% 10 ?????? VnCVV )()還原糖(以葡萄糖計 式中 V0:斐林試劑標(biāo)定值 (毫升 ) V:斐林試劑測定值 (毫升 ) C:標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液濃度 (克 /毫升 ) n:試樣稀釋倍數(shù) v1:所取試樣稀釋液體積 (毫升 ) 6 說明 (1)滴定速度、三角瓶壁厚度和熱源的穩(wěn)定程度等,對測定精密度影響很大。 正式試驗:吸取斐林試劑甲、乙液各 5 毫升,置入 250 毫升三角瓶中,加 V1 毫升試樣稀釋液和 (V21)毫升 %標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液,補(bǔ)加 [(V0+10)(V1+V2)]毫升水,搖勻,以下同標(biāo)定時操作,總耗糖量為 V毫升。 3 儀器與設(shè)備 ( 1)三角瓶 ( 2)容量瓶 ( 3)分析天平 ( 4)干燥器 ( 5)電熱恒溫干燥箱 ( 6)滴定管 ( 7)稱量瓶 ( 8)移液管 ( 9)電爐 4 測定步驟 斐林試劑的標(biāo)定 吸取斐林試劑甲、乙液各 5 毫升,置入 250 毫升三角瓶中,加 10 毫升水,并從滴定管中預(yù)先加入約 20 毫升 %標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液 (其量控制在后滴定時消耗%標(biāo)準(zhǔn)葡萄搪溶液 1 毫升以內(nèi) ),搖勻,于電爐上加熱至沸,立即以 4~5 秒鐘1 滴的速 度繼續(xù)用 %標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液滴定至藍(lán)色消失,此滴定操作需在 1 分鐘內(nèi)完成,總耗糖量為 V0 毫升。 乙液:稱取 117g 酒石酸鉀鈉, 氫氧化鈉, 亞鐵氰化鉀,用水溶解并定容至 1000ml。另外,斐林試劑中加入亞鐵氰化鉀 (黃血鹽 ),使紅色氧化亞銅沉淀生成可溶性的復(fù)鹽,反應(yīng)終點更為明顯。 5 計算 從附表 21 查得 10 毫升斐林試劑消耗水解糖液體積相當(dāng)于 100 毫升水解糖液中所含葡萄糖量( G),則 1 毫升水解糖液中含葡萄糖量為 G/100,再乘以斐林試劑校正值,即為 1 毫升水解糖液中實際含葡萄糖量: )(100 gfG ? %% ?????? WfG)粗淀粉( 式中 500:試樣稀釋體積( ml) W:試樣重量( g) :葡萄糖與淀粉的換算系數(shù) 6 參考書 ( 1)天津輕工業(yè)學(xué)院等,《工業(yè)發(fā)酵分析》,輕工業(yè)出版社, 1980 年 附表 21 斐林試劑糖量表 消耗糖液 體 積 (毫升 ) 相當(dāng)葡萄 糖 量 (毫克 ) 100毫升糖液中所含葡萄糖的量 (毫克 ) 消耗糖液 體 積 (毫升 ) 相當(dāng)葡萄 糖 量 (毫克 ) 100 毫升糖液中所含葡萄糖的量 (毫克 ) 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 327 307 289 274 260 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 實驗三 還原糖的測定 1 原理 原糖的測定采用快速法。 圖 21 水解裝置 校正值的計算: 先求得 10 毫升斐林試劑相當(dāng)?shù)钠咸烟强藬?shù) (F), F=CV 式中 C:標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液濃度 (g/ml) 再從斐林試劑糖量表 (見附表 21)查得 V 毫升時相當(dāng)?shù)钠咸烟强藬?shù) (F0),斐林試劑校正值 f 為: 00 FCVFFf ?? 定糖 吸取斐林試劑甲、乙液各 5 毫升,置入 250 毫升三角瓶中,加 20 毫升水,并從滴定管中預(yù)先加入適量的水解糖液 (其量應(yīng)控制在后滴定時消耗水解糖液在 1 毫升以內(nèi) ),搖勻,于電爐上 加熱至沸,并保持微沸 2 分鐘。加 2 滴 1%次甲基藍(lán)溶液繼續(xù)用 %標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液滴定至藍(lán)色消失,此滴 定操作需在 1 分鐘內(nèi)完成。濾紙過濾濾液用 500毫升容量瓶接收,用水充分洗搽殘渣,然后用水定容至刻度,搖勻,為供試糖液。瓶口按上回流冷凝器或長玻璃管 (約 1 米 ),于沸水浴中回 流水解 3 小時 (圖 21)。 3 儀器與設(shè)備 ( 1)三角瓶 ( 2)長玻璃管 (約 1 米 ) ( 3)容量瓶 ( 4)分析天平 ( 5)干燥器 ( 6)電熱恒溫干燥箱 ( 7)滴定管 ( 8)稱量瓶 ( 9)移液管 ( 10) pH 試紙試驗 ( 11)電爐 ( 12)小銅鍋 4 測定步驟 試樣水解 粗淀粉測定中試樣水解:準(zhǔn)確稱取試樣 ~2 克,置入 250 毫升三角瓶中。 1%次甲基藍(lán)溶液 稱取 1 克次甲基藍(lán),加 100 毫升水,加熱溶解,貯存于棕色瓶中。 20%鹽酸溶液 量取 20 毫升濃鹽酸,緩慢倒入 80 毫開水中。 乙液:稱取 346 克酒石酸鉀鈉, 100 克氫氧化鈉,用水溶解并稀釋至 1000 毫升。因次甲基藍(lán)氧化能力較二價銅弱,故待二價銅全部被還原后,過量一滴還原糖立即使次甲基藍(lán)還原,溶液藍(lán)色消失以示終點: =+( C H O H )4H CC H 2 O HO( C H O H ) 4C O O HC H 2 O H+SN( C H 3 ) 2 NN+( C H 3 ) 2 C l+ H 2 OSHN( C H 3 ) 2 NN ( C H 3 ) 2+ H C l次 甲 基 藍(lán) ( 藍(lán) 色 )( 無 色 ) 2 試劑 斐林試劑 甲液:稱取 克硫酸銅 (CuSO4178。平時甲、乙液分別貯存,測定時甲、乙液等體積混合。 斐林試劑由甲、乙液組成。 ( 2)測定水分時,稱量恒重指試樣連續(xù)兩次干燥后,稱量之差不超過 2mg。 計算 %1 0 0% 01 21 ???? WW WW)水分( 式中 W0:稱量瓶重( g) W1:干燥前試樣與稱量瓶重( g) W2:干燥后試樣與稱量瓶重( g) 4 說明 ( 1)原料的水分測定一般需采用 100105℃烘箱中直接干燥,其結(jié)果較為準(zhǔn)確。 2 儀器與設(shè)備 ( 1)分析天平 ( 2)稱量瓶 ( 3)干燥器 ( 4)電熱恒溫干燥箱 3 測定步驟 準(zhǔn)確稱取約 2 克試樣,置入經(jīng) 100l05℃干燥恒重后的稱量瓶中,在 100105℃烘箱中干燥 34 小時,取出,置入干燥器中冷卻至室溫,稱重。試樣的水分一般是指在 100℃左右直接干燥的情況下,所失去的總量。 1 原理 樣品中的水分受熱后產(chǎn)生的蒸汽壓,高于空氣在電熱干
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