臨檢血液概述、采血、抗凝劑概要-資料下載頁
2025-09-25 03:40本頁面
【正文】 基酸含有不同 數(shù)量的氨基〔 NH2〕和 羧基〔 COOH〕，同時還有其他活性基團。在游離狀態(tài)時， NH2獲得一個 H+變成帶正電的 NH3+，而 COOH失去一個 H+ 變成帶負電的 COO。分別與不同染料結(jié)合。 c. 周圍環(huán)境的酸堿度： 如環(huán)境 pH＜ pI〔 pI 為等電點〕，那么蛋白質(zhì)帶正電，結(jié)合酸性 染料；反之， pH＞ pI，那么結(jié)合堿性染料。 PH↓→ H＋增多 → 易與伊紅結(jié)合 → 染色偏紅 PH↑→ H＋減少 → 易與美藍結(jié)合 → 偏藍 第五十二頁，共六十一頁。 〔二〕試劑 1. Wright染液 瑞氏染粉 ,甲醇 2. 磷酸鹽緩沖液〔 PBS〕： 〔 － 〕 3. 磷酸二氫鉀〔無水〕 ，磷酸氫二鈉〔無水〕 , 4. 蒸餾水加到 1000ml。 5. 配好后用磷酸鹽溶液校正 pH，塞緊瓶口備用。 第五十三頁，共六十一頁。 1 2 3 3. 染色方法： a. 用蠟筆在血膜兩頭劃線，平放于染色架上。 b. 加瑞氏染液覆蓋血膜，固定 1min。 c. 滴加等量或稍多的緩沖液，混勻，染色 510 分鐘。 d. 用清水沖洗，待干后鏡檢。 第五十四頁，共六十一頁。 4. 本卷須知： 5. 6. a. 血膜要干透后才能染色，否那么染色時易脫落 7. b. 染色時間與染液濃度、室溫及細胞多少有關(guān)， 8. 一般染液淡、染色時間長些效果好。 9. c. 染液不能過少，以防蒸發(fā)沉淀。 10. d. 沖洗時不能先倒掉染液，應(yīng)以流水沖，防染料 11. 沉著。沖洗時間也不能長。 12. e. 染色過淡，可復(fù)染。 13. f. 染色過深可用水沖洗或浸泡，還可用甲醇脫色 第五十五頁，共六十一頁。 第五十六頁，共六十一頁。 姬姆薩染色法 〔一〕染色原理： 根本成分仍然是伊紅和亞甲藍，改 進了染料的質(zhì)量，使細胞核著色好，結(jié)構(gòu)顯示更清晰，而胞漿和中性顆粒染色較差。 〔二〕試劑 Giemsa 甲醇 純甘油 〔三〕染色方法 1. 甲醇固定枯燥血膜 35min 2. 將血膜在染液中浸染 1030min 3. 流水沖洗 ,待干后鏡檢 第五十七頁，共六十一頁。 瑞氏－吉姆薩復(fù)合染色法 優(yōu)點：細胞核與細胞質(zhì)均著色良好 第五十八頁，共六十一頁。 六 血細胞顯微鏡計數(shù)法 原理：將待測標(biāo)本經(jīng)過適當(dāng)稀釋〔或濃縮〕，有時還需將標(biāo)本進行染色后，充入計數(shù)池，在顯微鏡下計數(shù)一定體積內(nèi)的細胞，再換算成每升標(biāo)本內(nèi)的細胞數(shù)。 優(yōu)點：操作簡便、設(shè)備簡單、價廉 缺點：影響因素多、費時、費力 第五十九頁，共六十一頁。 質(zhì)量控制： 計數(shù)誤差：采血局部不準(zhǔn)、稀釋倍數(shù)不準(zhǔn)、充液不 當(dāng)、血液凝固、誤認、充液有氣泡等 固有誤差：計數(shù)域誤差〔細胞分布不均〕 儀器誤差〔儀器不精密〕 第六十頁，共六十一頁。 內(nèi)容總結(jié) 臨床檢驗根底。血漿粘度 〔血漿蛋白濃度〕。還能抑制凝血酶的自我催化及抑制。適用范圍：紅細胞檢驗（紅細胞計數(shù)、血紅蛋白。魏氏法血沉測定用濃度為 ，與血液比例為 1:4〔 V： V〕。 30176。45 176。分兩相進行，第一相是酸性伊紅與細胞中的堿性物質(zhì)如血紅蛋白、嗜酸性顆粒結(jié)合。質(zhì)量控制：。固有誤差：計數(shù)域誤差〔細胞分布不均〕。儀器誤差〔儀器不精密〕 第六十一頁，共六十一頁。
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