【正文】 插管時易造成動脈內膜內卷或插入層間而失?。缓蟪謩用}套管，以其尖端斜面與動脈平行地向心方向插入動脈內，用細線扎緊并在套管分叉處打結固定。最后將動脈套管作適當固定，以保證測壓時血液進出套管之通暢。 ⑶ 頸外靜脈插管術：頸外靜脈可用于注射、輸液和中心靜脈壓之測量。血管套管插入方法簡介： 在插管前先將兔肝素化，并將導管充盈含肝素之生理鹽水。在導管上作一長 58cm的記號，導管準備好后，先將靜脈遠心端結扎，靠近結扎點作一剪口，將導管插入剪口，輕柔地向心端緩慢插入，遇有阻抗即退回改變角度重插，切不可硬插（易插破靜脈進入胸腔）一般達導管上記號為止。 （二）兔、狗股部手術 股部手術目的在于分離股神經、股動、靜脈及進行股動、靜脈插管，以備放血、輸血輸液、注射藥物等用。 狗、兔等動物手術方法基本相同?，F(xiàn)以兔為例其基本步驟如下： 股部神經、血管解剖特點 ，腹股溝部剪毛。 ，辨明動脈走向，在該處作局部麻醉并作方向一致長約 45cm的切口。用止血鉗小心分離肌肉及深部筋膜，便清楚地暴露出股三角區(qū)。股動脈及神經即由此三角區(qū)通過。股神經位于外側，股靜脈位于內側，肌動脈位于中間偏后。 ，然后分離股動、靜脈間的結締組織，清楚地暴露股靜脈，穿兩根細線備用。再仔細分離股動脈，切勿傷及股動脈分支。動脈下方穿兩根細線備用。 、靜脈插管。狗的血管粗大，插管較易。家兔血管細，插管較難；因此要細致耐心和掌握要領。 （ 1）股動脈插管術：于股動脈近心端用動脈夾夾住，遠心端用細線結扎，牽引此線在貼近遠心端結扎處剪開血管向心插入動脈套管，結扎固定后備放血或注射用。 （ 2）股靜脈插管術：股靜脈插管術，除不需用動脈夾外，基本與股動脈插管相同。但因靜脈于遠心端結扎后靜脈塌陷呈細線狀，較難插管，因此可試用靜脈充盈插管法。即：在股靜脈近心端用血管夾夾?。ㄒ部捎镁€提起），活動肢體使股靜脈充盈，股靜脈遠心端結扎線打一活扣，待手術者剪口插入套管后，再結扎緊。 八、實驗動物的處死方法 （一）蛙類 常用金屬探針插入枕骨大孔，破壞腦脊椎的方法處死。將蛙用溫布包住，露出頭部，左手執(zhí)蛙，并且用食指按壓其頭部前端，拇指按壓背部，使頭前俯；右手持金屬探針由頭前端沿線向尾方刺觸，觸及凹陷處即枕骨大孔所在。將探針由凹陷處垂直刺入，刺破皮膚即入枕骨大孔。這時將探針尖端轉向頭方，向前探入顱腔，然后向各方攪動，以搗毀腦組織。 （二）大鼠和小鼠 右手抓住鼠用力向后拉，同時左手拇指與食指用力向下按住鼠頭，將脊髓與腦髓拉斷，鼠便立即死亡。 實驗者戴上棉綠紗手套，用右手握住大鼠頭部，左手握住背部，露出頸部，助手用剪刀在鼠頸部將鼠頭剪掉。小鼠處死法相同。 右手抓住鼠尾，提起，用力摔擊其頭部，鼠痙攣后立即死亡。用小木錘用力擊打鼠頭部也可致死。 可采用鼠眼眶動脈和靜脈急性大量失血方法使鼠立即死亡。 吸入二氧化碳，大、小鼠在高二氧化碳濃度的環(huán)境中即可致死。 （三）狗、貓、兔、豚鼠 向動物靜脈內注入一定量的空氣，使之發(fā)生栓塞而死。當空氣注入靜脈后，可與血液相混成泡沫狀，隨血液循環(huán)到全身。如進入肺動脈，可梗阻其分支，進入心臟冠狀動脈，造成冠狀動脈阻塞，發(fā)生嚴重的血液循環(huán)障礙，動物很快致死。一般兔、貓等靜脈內注入 2040ml空氣即可致死。狗由靜脈注入 80～ 150ml空氣，可很快致死。 先使動物輕度麻醉，暴露股三角區(qū)，用利刀在股三角區(qū)作一個約 10cm的橫切口，把股動、靜脈全切斷，立即噴出血液。用一塊濕紗布不斷擦去股動脈切周圍處的血液和血凝塊，同時不斷的用自來水沖洗流血，使股動脈切口處保持暢通，動物 3～ 5分鐘內即可致死。采用此種方法，動物十分安靜，對臟器無損傷，對活殺采集病理切片標本是一種較好的方法。 如果急性實驗后，腦已暴露，可用器具將延髓破壞，導致動物死亡。對家兔也可用木錘用力錘擊其后腦部，損壞延腦，造成死亡。 將動物開胸，造成開放性氣胸。這時胸膜腔的壓力與大氣壓力相等，肺臟因受大氣壓縮發(fā)生肺萎陷，縱膈擺動，動物窒息而死。 靜脈內注入一定量的氯化鉀溶液，使動物心肌失去收縮能力，心臟急性擴張，致心臟馳緩性停跳而死亡。每條成年兔由兔耳緣靜脈注入 10％氯化鉀溶液 5～ 10ml；每條成年狗由狗前肢或后肢下靜脈注入20～ 30ml，即可致死。 九、實驗動物編號標記方法 動物在實驗前常常需要作適當?shù)姆纸M，那么就要將其標記使各組加以區(qū)別。標記的方法很多，良好的標記方法應滿足標號清晰、耐久、簡便、適用的要求。 常用的標記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號牌等方法。 （一）顏料涂染 這種標記方法在實驗室最常使用，也很方便。使用的顏料一般有 35%苦味酸溶液（黃）， 2%硝酸銀溶液（咖啡色）和 %中性品紅（紅色）溶液等。根據(jù)被毛顏色不同選擇使用。標記時用毛筆或棉簽蘸取上述溶液，在動物體的不同部位涂上斑點，以示不同號碼。編號的原則是：先左后右，從前到后。 一般把涂在左前腿上的計為 1號，左側腹部計為 2號，左后腿為 3號，頭頂部計為 4號，腰背部為 5號，尾基部為 6號，右前腿為 7號，右側腰部為 8號，右后腿計為 9號。若動物編號超過 10或更大數(shù)字時，可使用上述兩種不同顏色的溶液，即把一種顏色作為個倍數(shù)，另一種顏色作為十位數(shù)，這種交互使用可編到 99號，假使把紅的記為十位數(shù)，黃色記為個位數(shù)，那么右后腿黃斑，頭頂紅斑，則表示是 49號鼠，其余類推。 顏色被毛涂擦標記法 （二）烙印法 用烙印鉗在動物無體毛或明顯部位烙壓上號碼，然后用棉簽蘸著溶在酒精中的黑墨在刺號上加以涂抹，烙印前最好對烙印部位預先用酒精消毒。此法多用于大、中型動物。 （三）號牌法 用金屬制的牌號固定于實驗動物的耳部，大動物可系于頸上。 對猴、狗、貓等大動物有時可不做特別標記，只記錄它們的外表和毛色即可。 另外還有針刺法、穿耳孔法、斷趾編號、剪尾編號、被毛剪號、籠子編號。 十、實驗動物的急救措施 當實驗進行中因麻醉過量、大失血、過強的創(chuàng)傷、窒息等各種原因，而使動物血壓急劇下降，呼吸極慢甚至呼吸停止等臨床死亡癥狀時，應立即進行急救。急救的方法可根據(jù)動物情況而定。對狗、兔、貓常用的急救措施有下面幾種。 （一）針刺 針刺人中穴對挽救家兔效果較好。對狗用每分鐘幾百次頻率的脈沖電刺激膈神經效果較好。 （二）注射強心劑 可以靜脈注射 %腎上腺素 1ml，必要時直接作心臟內注射。當動物注射腎上腺素后，如心臟已搏動但極為無力時，可從靜脈或心腔內注射 1%氯化鈣 5ml。鈣離子可使心肌收縮加強，血壓上升。 （三）注射呼吸中樞興奮藥 可從靜脈注射山梗菜堿或尼可剎米。給藥劑量和藥理作用如下： 尼可剎米：每只動物一次注 25%1ml。此藥可直接興奮延髓呼吸中樞，使呼吸加速加深；對血管運動中樞的興奮作用較弱。在動物抑制情況下作用更明顯。 山梗菜堿：每條動物一次可注入 1%。此藥可刺激頸動脈體的化學感受器，反射性地興奮呼吸中樞；同時此藥對呼吸中樞還有輕微的直接興奮作用。作為呼吸興奮藥，它比其他藥作用迅速而顯著。呼吸可迅速加深加快，血壓亦同時升高。 （四）動脈快速注射高滲葡萄糖液 一般常采用經動物動脈逆血流加壓、快速、沖擊式地注入 40%葡萄糖溶液。注射量根據(jù)動物而定，如狗可按 23ml/kg體重計算。這樣可刺激動物血管內感受器，反射性地引起血壓呼吸的改善。 （五）動脈快速輸血、輸液 在作失血性休克或死亡復活等實驗時采用?？稍趧游锕蓜用}插管，連接加壓輸液裝置（血壓計連接輸液瓶上口，下口通過膠皮管連接塑料套管）。當動物發(fā)生臨床死亡時，即可加壓（ 1802022mmHg）快速從股動脈輸血和低分子右旋糖酐。如實驗前動物曾用肝素抗凝，由于微循環(huán)血管中始終保持通暢，不出現(xiàn)血管中血液凝固現(xiàn)象，因此就是動物出現(xiàn)臨床死亡后數(shù)分鐘，采用此種急救措施仍易救活。 （六）人工呼吸 可采用雙手壓迫動物胸廓進行人工呼吸。如有人工呼吸器，可行氣管插管后，連接人工呼吸器進行人工呼吸。采用人工呼吸器時，應調整其容量。 有條件時，當動物呼吸停止，而心搏極弱或剛停止時，可用 5%CO2和 60%O2的混合氣體進行人工呼吸，效果更好。 十一、動物實驗后的護理 動物實驗后，動物機體受到不同程度的外界刺激或損傷，機體原來的平衡狀態(tài)被破壞，各系統(tǒng)功能發(fā)生了變化，飲食、代謝等正常功能均受到影響。因此對受試動物在實驗后一定要加強護理。 （一）注意飲食衛(wèi)生： 動物在實驗后可能出現(xiàn)食欲減退或喪失，應盡可能使動物恢復食欲，想辦法通過食物來補充水、鹽及其它營養(yǎng)。 （二）細心護理，防止意外損傷： 要防止動物的過度興奮狀態(tài)，發(fā)生挫傷和骨折。全麻動物實驗后仍處于昏睡狀態(tài)，應盡可能使其平臥，防止因舌、咽部肌肉松弛而引起窒息。對麻醉后的大小便失禁，要注意搞好動物的清潔衛(wèi)生。 （三）控制好受試動物的環(huán)境： 實驗后動物機體抵抗力受到影響，對環(huán)境條件要求較高，應很好控制受試動物的環(huán)境條件。 因麻醉動物體溫降低，應及時調整好室內溫度和濕度，防止動物感冒，室內溫差應控制在 177。 2℃ 范圍內。 動物的鋪墊物應經常更換，鋪墊物應消毒滅菌、柔軟、吸水、無塵粒，便于更換。最好每天更換一次。 飼養(yǎng)動物區(qū)域光線宜暗淡些，切忌用強光照明。 飼養(yǎng)環(huán)境要保持安靜。