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正文內(nèi)容

分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)原理(編輯修改稿)

2025-02-14 00:54 本頁(yè)面
 

【文章內(nèi)容簡(jiǎn)介】 仿 這類有機(jī)溶劑 不但能使核蛋白與核酸解聚 (但不能破壞核酸 ),而且對(duì)蛋白質(zhì)有變性作用。因而對(duì)酶 (RNase)有抑制作用。 酚不能完全抑制 RNase活性,但酚一般都加入了 8-羥基喹啉 (一種抗氧化劑,一種指示劑 ),因而加強(qiáng)了對(duì)RNase的抑制效果。氯仿的抑制效果比較強(qiáng),因此酚與氯仿常聯(lián)合使用。 蛋白酶 K也能抑制 RNase活性。有一種情況挺特殊,即該酶在 1- 2%的 SDS存在下,其活性反而會(huì)增加。 包括 SDS(十二烷基硫酸鈉 ), 十二烷酰肌氨酸鈉,脫氧膽酸鈉等陰離子去污劑。這些陰離子去污劑可使核酸與蛋白質(zhì)解聚,并可與蛋白質(zhì)側(cè)鏈上帶正電荷的基團(tuán)結(jié)合,在高濃度 KCl存在下,形成 SDS-蛋白質(zhì)復(fù)合物而沉淀。 (胍類)鹽酸胍, 異硫氰酸胍 ,作用非常強(qiáng)的一種蛋白變性劑,可完全破壞蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu),從而使細(xì)胞結(jié)構(gòu)降解,核酸與核蛋白分離,所以又稱解偶劑。 ③ RNase的特異抑制劑 a. RNase阻抑蛋白 (RNasin),是一種酸性糖蛋白可與RNase以非共價(jià)鍵的形式結(jié)合,從而抑制 RNase活性, RNasin最好不與蛋白質(zhì)變性劑一同使用 ,因變性劑亦可破壞 RNasin ,從而使其喪失作用。但可與二巰基乙醇一同使用,可增強(qiáng) RNasin的使用效果。 ,這也是一種 RNase特異性抑制劑,幾乎可完全抑制 RNase的活性。 為達(dá)到完全、徹底抑制 RNase活性的目的, 常聯(lián)合使用 ,而且有些抑制劑 (去除蛋白質(zhì)物質(zhì) )一般有 4種作用; 破壞細(xì)胞膜,使核酸與蛋白質(zhì)分離,沉淀蛋白質(zhì)、抑制 RNase活性。 因此幾乎包括了 RNA提取、分離、純化的所有目的。 、提取方法 步驟: (1)創(chuàng)造一個(gè)無(wú) RNase環(huán)境; (2)組織或細(xì)胞的勻漿,同時(shí)得加入 RNase抑制劑 (3)裂解細(xì)胞; (4)去除蛋白、 DNA等大分子物質(zhì); (5)沉淀 RNA; (6)漂洗; (7)溶解 RNA。 酚 : 使核酸與核蛋白分離、變性沉淀蛋 白質(zhì),抑制 RNase活性。 異硫氰酸胍 :破壞裂解細(xì)胞,使核酸與核蛋白分離,變性沉淀蛋白質(zhì),同是具有很強(qiáng)的 RNase抑制作用。這是一個(gè)關(guān)鍵的試劑,由于它是萬(wàn)能的,所以實(shí)驗(yàn)步驟變得簡(jiǎn)單。 Trizol試劑盒所提供的試劑: 自己需要配制的試劑 氯仿:蛋白質(zhì)變性作用,增強(qiáng)對(duì) RNase抑制作用。 異丙醇:沉淀 RNA。 75%乙醇:漂洗、去除鹽、殘留有機(jī)溶劑等雜質(zhì)。 無(wú) RNase水或 %SDS溶液 (后者較好 )(必須用 DEPC處理 )。 ① 勻漿化 : 取 50100mg組織放在勻漿管中,加 1ml Trizol試劑,然后進(jìn)行勻漿,此時(shí)裂解細(xì)胞和 RNase抑制同時(shí)進(jìn)行。 :倒掉培養(yǎng)液,然后直接向培養(yǎng)瓶 (皿 )中加入 Trizol試劑 (按 10cm2加 1ml Trizol試劑計(jì)算加入量 )。 :離心收集細(xì)胞,然后加入 Trizol試劑(按 5~ 10 106或 1 107細(xì)菌加入 1ml比例計(jì)算加入量 )。 操作步驟 ② 兩相分離 將勻漿化的樣品在 15℃ ~ 30℃ 環(huán)境中放置 5min,以便核酸蛋白復(fù)合物充分解聚 。(加 Trizol試劑之前,樣品一定要保持低溫,防止 RNase 發(fā)揮作用,在研磨過(guò)程中可加液氮 ) 然后按每 1ml Trizol試劑加入 氯仿。蓋緊試管蓋,用手劇烈振蕩 15秒,之后在15?~ 30℃ 條件保溫 2~ 3min。離心: 12022g離心15min,離心時(shí)溫度要控制在 2℃ ~ 8℃ 。( 12022g離心是一個(gè)關(guān)鍵步驟 ,也是該方法獨(dú)到之處,可 將蛋白質(zhì), DNA等大分子沉淀 )。離心之后,就會(huì)形成三相:下層是紅色的酚和氯仿(含有蛋白質(zhì)和DNA);中間層是白色的 DNA和蛋白質(zhì)沉淀;上層是水相, RNA就在此層,水相大約占總體積的 60% ③ RNA沉淀 將水相轉(zhuǎn)移到一個(gè)新的試管中,并加入異丙醇混勻,加入量按每 ml Trizol試劑加 。在 15?~ 30℃ 條件下,保溫 10min。然后在 2~ 8℃ 條件下, 12022g離心 10min,此時(shí)就會(huì)在管底或底部邊上出現(xiàn) RNA沉淀,離心之前, RNA沉淀通??床灰姡x心之后常??煽匆娔z樣沉淀。 ④ RNA漂洗 移去上清液,加入 75%乙醇至少 1ml,渦旋振動(dòng)幾次,然后以 7500g離心 5min(溫度 2?~ 8℃) ,又可形成 RNA沉淀,并移去上清液。 ⑤ 重新溶解 RNA 將 RNA沉淀在空氣中放量 5~ 10min,以便揮發(fā)掉殘留的乙醇。注意 干燥時(shí)間不宜太長(zhǎng) ,以防 RNA完全干燥。完全干燥的 RNA很難溶解。最后用無(wú)RNase水或 % SDS溶液溶解 RNA,并用移液管吹打幾次,并在 55℃ ~ 60℃ 保溫 10min,以便使 RNA完全溶解。 ⑥ 判定純度和計(jì)算含量,用紫外分光光度計(jì)測(cè)量溶液的吸光度質(zhì)( A)。 A260/280在 ~ ,符合實(shí)驗(yàn)要求。 1OD值= 40μ g RNA,據(jù)此再計(jì)算 RNA含量。 一般來(lái)講,該方法可從 1mg組織中提取的 RNA含量分別為: 肝和脾為 6~ 10μ g ;腎 3~ 4μ g ,肌肉和腦為 1~ 5μ g ,胎盤 1~ 4μ g 。 對(duì)培養(yǎng)的細(xì)胞來(lái)講,1 106個(gè)上皮細(xì)胞中可提取 8~ 15μ g ,成纖維細(xì)胞5~ 7μ g 。 用 Trizol試劑盒法提取的 RNA, 基本上可滿足所有實(shí)驗(yàn)的需要 ,如 Northern blot,斑點(diǎn)雜交, mRNA分離、體外翻譯,分子克隆等。 該方法操作簡(jiǎn)便,提取的 RNA完整,整個(gè)提取過(guò)程僅需 1h,故現(xiàn)在廣泛使用。 第三節(jié) 核酸分子雜交技術(shù) :在化學(xué)及生物學(xué)意義上的探針(Probe),是指能與特定的靶分子發(fā)生特異性相互作用的分子,并可被特殊的方法所探知 (檢測(cè)到 )。所謂核酸分子探針則是指特定的已知核酸片段,并帶有標(biāo)記物,能與互補(bǔ)核酸序列退火雜交,因此可以用于待測(cè)核酸樣品中特定基因順序的探測(cè)(可定性、定量)。 (一 )探針的概念、種類及其選擇、探針的標(biāo)記 、選擇及特點(diǎn) 種類: 基因組 DNA探針、 cDNA探針、 RNA探 針、寡核苷酸探針 選擇: 寡核苷酸探針 寡核苷酸探針是指人工合成的短鏈核苷 酸片段,并帶有標(biāo)記物 特點(diǎn): 人為控制,雜交時(shí)間短,特異性高,可 以用于點(diǎn)突變檢測(cè);缺點(diǎn)是靈敏度低 設(shè)計(jì)寡核苷酸探針應(yīng)遵循的 ( 以下 ) 幾個(gè)原則: ① 探針長(zhǎng)度:一般要求 10~ 50bP。 過(guò)短則特異性降低 , 過(guò)長(zhǎng) , 則合成困難 、 雜交時(shí)間延長(zhǎng) , 亦會(huì)出現(xiàn)非特異性雜交 。應(yīng)不短不長(zhǎng) 。 ( 一般 20bp) ② G: C堿基對(duì)含量應(yīng)占 40~ 60% ;過(guò)少 , 則不易雜交 ,或雜交雙鏈不穩(wěn)定;過(guò)多 , 則會(huì)產(chǎn)生非特異性雜交 , 應(yīng)不多也不少 。 ( 一般 AT、 GC各占 50%) ③ 探針內(nèi)部的互補(bǔ)堿基對(duì)不應(yīng)大于 4bP, 否則會(huì)形成探針內(nèi)部的 “ 發(fā)夾 ” 結(jié)構(gòu) 。 ④ 同一堿基的連續(xù)出現(xiàn)次數(shù)不應(yīng)超過(guò) 4次 。 ⑤ 探針設(shè)計(jì)完后 , 最好利用基因庫(kù)軟件進(jìn)行分析 , 并與已知的各種基因序列進(jìn)行同源性比較 , 如果該探針與非目的基因序列有 70% 以上的同源性 , 或連續(xù)有 8個(gè)以上的堿基序列相同 , 則應(yīng)重新設(shè)計(jì)探針序列 。 標(biāo)記物: 放射性核素: 32P、 35S、 3H、 125I、 131I 非放射性標(biāo)記物:半抗原(生物素、地高辛);配體;熒光素;化學(xué)發(fā)光物 根據(jù)待測(cè)核酸分子存在的部位不同,可分固相 雜交(膜上印跡雜交、細(xì)胞原位雜交)和液相雜交。 其中膜上印跡雜交應(yīng)用廣泛。 膜上印跡雜交是指將待測(cè)核酸序列片段結(jié)合到 一定的固相支持物上,然后與存在于液相中標(biāo)記的 核酸探針進(jìn)行雜交的過(guò)程。 (二)雜交 首先用凝膠電泳方法將待測(cè)核酸片段分離 , 然后用 印跡技術(shù)將分離的核酸片段轉(zhuǎn)移到特異的固相支持物上 ( 轉(zhuǎn)移后的核酸片段將保持其原來(lái)的相對(duì)位置不變 ) 。 再用標(biāo)記的核酸探針與固相支持物上的核酸片段進(jìn)行 雜交 。 最后洗去未雜交的游離的探針?lè)肿?, 通過(guò)放射自顯影等檢測(cè) 方法顯示標(biāo)記的探針的位置及量的多少 。 概括起來(lái) , 雜交主要包括三個(gè)步驟:印跡 、 雜交和檢測(cè) 。 膜上印跡雜交的基本操作流程 印跡技術(shù)是指將待測(cè)核酸分子 轉(zhuǎn)移 并結(jié)合到一定的 固相支持物 上的方法。 印跡技術(shù)主要包括兩個(gè)關(guān)鍵因素:選擇良好的固相支持物;有效的轉(zhuǎn)移方法。 ⑴ 固相支持物的選擇 ① 具有良好的機(jī)械性能,如柔軟性好,韌性強(qiáng),以便操作 時(shí)不易損壞; ② 具有較強(qiáng)的結(jié)合核酸分子的能力; ③ 與核酸分子結(jié)合后,應(yīng)不影響其與探針?lè)肿拥碾s交反應(yīng); ④ 與核酸分子的結(jié)合穩(wěn)定、牢固,能經(jīng)受雜交、洗膜等操 作過(guò)程,而不會(huì)脫落或脫落極少; ⑤ 非特異性吸附較少,即使有,在洗膜時(shí)也易被洗脫掉。 硝酸纖維素濾膜 尼龍膜 化學(xué)活化膜 濾紙 其中前 2種更為常用 目前常用的固相支持物 硝酸纖維素濾膜 具有較強(qiáng)的吸附結(jié)合單鏈 DNA和 RNA的能力 ,特別是在高鹽濃度 , 其結(jié)合力可達(dá) 80μg/cm2~100μg/cm2。 這種結(jié)合主要靠疏水作用 。 非特異性吸附核酸 ( 探針 ) 能力較弱 , 因此雜交信號(hào)本底值較低 。 常用于 Southern、 Northern斑點(diǎn)印跡及克隆篩選等實(shí)驗(yàn) 。 缺點(diǎn): ① 與核酸的結(jié)合力較弱 ( 因?yàn)槭强渴杷饔?) , 在雜交及洗脫的進(jìn)程中 , 核酸會(huì)慢慢脫落 , 特別是在高溫情況下 , 更容易脫落 , 從而使雜交率下降 。 另外硝酸纖維素膜對(duì)于小分子量 DNA片段結(jié)合力更弱 , 因此不太適合小分子 DNA片段的雜交 。 ② 硝酸纖維素膜質(zhì)地較脆 , 特別是經(jīng)烘烤后更易破損 , 因此操作不方便 , 須特別小心 。 另外值得注意的是 , 硝酸纖維素膜與核酸的結(jié)合 , 有賴于高鹽濃度 , 而高鹽溶液又不適合于電轉(zhuǎn)印跡法 ( 電流大 , 產(chǎn)熱 ) 。 尼龍膜 尼龍膜是目前較理想的一種核酸固相支持物 , 它有多種類型 。 有的尼龍膜未經(jīng)特殊處理 , 叫普通尼龍膜 。 有些則是經(jīng)過(guò)了正電荷基團(tuán)的修飾 , 又叫特殊尼龍膜 。 特殊尼龍膜帶有正電荷 , 核酸帶有負(fù)電荷 , 因此二者可靠靜電吸引牢固結(jié)合 。 因此尼龍膜對(duì)核酸的結(jié)合力要比硝酸纖維素膜強(qiáng)好多倍 。 特別是經(jīng)短波紫外線照射后 , 核酸中的部分嘧啶堿基可與膜上的帶正電荷的氨基相互交聯(lián) , 從而使結(jié)合更加牢固 。 因此特別適用于小分子核酸片段的雜交 。 另外堿處理也可使核酸牢固地結(jié)合在尼龍膜上 , 因此使 DNA的變性 、 吸附和固定可一步完成 , 特別適用于菌落原位印跡法 。 尼龍膜質(zhì)地堅(jiān)韌 , 不易損壞 , 操作方便 ,可 進(jìn)行多次重復(fù)雜交 。 另外 , 在低離子強(qiáng)度條件下 , 也可與核酸牢固結(jié)合 , 因此適用于電轉(zhuǎn)印跡法 。 缺點(diǎn):由于結(jié)合力強(qiáng) , 非特異性吸附較多 ,雜交信號(hào)本底較高 , 應(yīng)注意封閉 。 ⑵ 印跡方法 轉(zhuǎn)移方法不同 , 可分為 ① 斑點(diǎn)或狹縫印跡 , 即直接將核酸樣品點(diǎn)樣于固相支持物上; ② 虹吸印跡法 , 利用毛細(xì)管虹吸作用 , 由轉(zhuǎn)移緩沖液帶動(dòng)核酸分子轉(zhuǎn)移到固相支持物上; ③ 電轉(zhuǎn)印跡法 , 即利用電場(chǎng)力的作用將核酸帶到固相支持物上; ④ 真空轉(zhuǎn)移法 , 即利用真空抽濾作用 , 將核酸分子帶到固相支持物上 。 根據(jù)要轉(zhuǎn)印核酸品種的不同 , 又可分為 Southern印跡法:是指將電泳分離的 DNA從 凝膠中轉(zhuǎn)移到固相支持物上的過(guò)程 。 Northern印跡法:是指 RNA的印跡過(guò)程 。 步驟: 。 酶切變成合適長(zhǎng)度的DNA片段 ( 根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康亩?, 突變檢測(cè)則短 , 定性定量則長(zhǎng) ) 。 一般理想的是 ~ 10Kb, 因片段大小直接影響轉(zhuǎn)移效率 。 。 分離 DNA片段 , 經(jīng) EB( 溴化乙錠 ) 染色后觀察 DNA片段大小 , 并與 DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)參照物比較 ( Marker) 。 記錄或照像各 DNA片段位置 。尤其留意我們所感興趣的 DNA片段 。 ( 瓊脂糖電泳常用于核酸 , 一般為水平板電泳 SDS電泳常用于蛋
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