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馬鈴薯m病毒重組cp抗血清的制備畢業(yè)論文-文庫吧在線文庫

2024-10-09 01:37上一頁面

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【正文】 創(chuàng)新。 本研究 工 作是總體研究的一部分,本實(shí)驗(yàn)室的目標(biāo)是利用重組 CP 制備出 6 種 主要病毒的特異性抗血清。目前, 未見 重組 CP 抗血清用于 PVM 檢測的報(bào)道。 2) 可大量 快 速制備出重組 CP。 一般 采用紫外吸收法 [14]和考馬斯亮藍(lán)染色法 [15]對 重組 蛋白 進(jìn)行定量。 對重組菌進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)之后,要先對細(xì)菌總蛋白進(jìn)行 SDSPAGE 分析,之后再對目的蛋白進(jìn)行純化。 基于 病毒核酸的分子生物學(xué)檢測法是檢測植物病毒的有效方法 [9]。抗血清效價(jià)≥3陰性值,結(jié) 果表明制備的抗血清的效價(jià)為 1: 64k(表 2)。重組蛋白的預(yù)期值為 36KDa,電泳結(jié)果顯示重組蛋白的分子量與預(yù)期大小一致,也就是 PVMCP 基因在受體菌中得到了順利表達(dá)。 4)洗板:同 2)。四免后采血,耳靜脈采血 1ml, ELISA 檢測抗血清效價(jià)。 2)分別將 30uL,60uL 待測蛋白質(zhì)樣品加入到另外兩支試管中,并用 PBS 補(bǔ)足至 150?l。 5)過濾過的樣品溶液 510mL。 6)室溫下放置 30min 左右,至裂解液不再粘稠。 5)向剩余培養(yǎng)液中加入 1%培養(yǎng)液體 積的 100mM IPTG(終濃度 1mM)誘導(dǎo)表達(dá),37℃ 震蕩培養(yǎng) 4h 左右。 PBST 洗滌緩沖液: PBS 緩沖液 100mL Tween20 50μL 封閉液: BSA 加 PBST 緩沖液至 5mL。 主要試劑 與儀器 三氯乙酸、 SDS、 Glycine、 Urea、 Acrylamide、 Bisarcylamide、二抗(上海生工);咪唑(北京鼎國);去氧膽酸鈉(上海伯奧);蛋白酶抑制劑 (PMSF)(Sigma);蛋白質(zhì) Marker;溶菌酶(北京索萊寶); 蛋白純化柱 (HiTrap Chelating HP)(HE Heacthcare)。 Cerovska[8]等克隆了 PVM的 CP基因并制備了重組 CP的抗血清 ,且成功用于Wsetern分析。但是 用這種方法 制備抗血清存在很多弊端。 ELISA檢測法仍然是國際馬鈴薯中心認(rèn)可的馬鈴薯病毒檢測的最基本方法。通過莖尖剝離與培養(yǎng)擴(kuò)繁,可以獲得大量無毒(脫毒)試管苗,并可 進(jìn)一步獲得脫毒微型薯與種子。 馬鈴薯病毒能夠?qū)е埋R鈴薯品種退化,具體表現(xiàn)是既影響馬鈴薯的產(chǎn)量,也會(huì)造成質(zhì)量的嚴(yán)重下降 [2]。 preparation of antiserum 3 引言 馬鈴薯 (Solanum tuberosum L.)是茄科茄屬的一年生草本植物,食用部分為塊莖。 用溶菌酶 方 法 首先 提取 細(xì) 菌總蛋白,然后利用鎳離子親和層析 純化重 組蛋白,獲得了高純度的 PVM 重組 CP。 coat protein (CP) gene。遺傳上馬鈴薯是同源四倍體的作物,雖然可以有性繁殖,但 一般利用塊莖進(jìn)行無性繁殖。其中外殼蛋白( CP)是由第三個(gè)編碼序列中的一個(gè) ORF編碼的,其大小約為 34kDa[5]。 基于核酸的分子檢測方法是在 PCR反應(yīng)基礎(chǔ)上建立起來的檢測技術(shù), PCR方法特異性好,靈敏度高 。 ELISA仍然是 當(dāng) 前生產(chǎn)應(yīng)用最 方便 、最廣泛的檢測 技術(shù)。 具體方法就是利用原核表達(dá)的重組 CP作抗原制備出馬鈴薯病毒抗血清。 3)利用高純度重組 CP 免疫家兔制備出高效價(jià)抗血清。 考馬斯亮藍(lán) G250( 5)染液配制: 考馬斯亮 藍(lán) G250 20mg 95%乙醇 10mL 濃磷酸 20mL 定容至 40mL, 4℃ 保存。g/mL Amp的 LB 液體培養(yǎng)液, 37℃ 震蕩培養(yǎng)過夜。 3)每克大腸桿菌中加入 8μ LPMSF( 50mM)和 80μ L 溶菌酶( 10mg/mL)。 2)用 mL 的 硫酸鎳洗柱掛鎳,活化純化柱。 純化蛋白的 SDSPAGE 檢測 PVMCP基因誘導(dǎo)表達(dá)的效果及重組 CP純化效果都通過 SDSPAGE檢測、確認(rèn)。初免劑量為 ,二免、三免、四免劑量為 。 具體步驟: 1)包被抗原:將抗原按 每孔包板,陰性對照用免疫前血清 100μL 每孔,空白對照用碳酸鹽緩沖液 100μL每孔包板, 37℃ , 2h。 9)測 OD 值: 450nm 波長。 目的蛋白 12 表 1 Bradford 蛋白定量法測定體系 試管號 0 1 2 3 4 5 6 7 標(biāo)準(zhǔn) BSA 溶液( ul) 0 20 40 60 80 100 待測蛋白溶液 (ul) 30 60 PBS( μl) 150 130 110 90 70 50 120 90 考馬斯亮藍(lán)( ml) 圖 2 蛋白質(zhì)定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線 抗血清 :效價(jià) 的測定 PVM 陽性物購自 Agdia 公司,間接 ELISA 反應(yīng)中有顏色,呈陽性反應(yīng),陰性對照無顏色,該結(jié)果表明本研究制備的抗血清具有 檢測 PVM 的能力,是 PVM特異性抗血清。 目測結(jié)果表明抗血清稀釋度為 1:8000 時(shí),反應(yīng)孔有可見的顏色,呈陽性。 DASELISA 于 1977年建立,白艷菊等利用該法對馬鈴薯病毒進(jìn)行檢測時(shí)對其做出了改進(jìn) [12]。 另外,本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),洗脫液中的咪唑濃度也要合適,洗滌與洗脫液合理搭配才能有好的純化效果。 與病毒粒子作抗原的傳統(tǒng)途徑相比, 重組 CP 途徑的優(yōu)點(diǎn)在于: 1) 制備 的重組 CP(抗原)純度高。 6)花費(fèi)低。另外,檢測實(shí)際也有保質(zhì)期,檢測試劑或試劑盒存放時(shí)間長了,其質(zhì)量也會(huì)受影響,抗血清的效價(jià)會(huì)變低。在論文完成之際,謹(jǐn)向我的導(dǎo)師致以最誠摯的感謝! 在實(shí)驗(yàn)和論文的完成過程中師姐辛佳、師兄宋志成給予了我專業(yè)知識以及實(shí)驗(yàn)方面的幫助,師姐師兄的認(rèn)真負(fù)責(zé)將成為我日后學(xué)習(xí)工作的榜樣,在此特別感謝! 值此論文完成之際,謹(jǐn)向所有幫助、支持過我的老師與同學(xué)致以最誠摯的謝意! 參考文獻(xiàn): [1] Jansky S, Jin L, Xie K, Xie C, Spooner D. Potato production and breeding in China. Potato Research, 2020, 52 (1): 57–65. [2]SolomonBlackburn R M, Barker H. Breeding virus resistant potatoes( Solanum tuberosum):A review of traditional and molecular approaches. Heredity, 2020, 86 (1): 17–35. [3] Gilbert J, Spillane C, Kavanagh T A, et al. Elicitation of Rxmediated resistance to PVX in potato does not require new RNA synthesis and may involve a latent hypersensitive response. 16 Mol Plant Microbe Interact, 1998, 11 (8): 833–835. [4] Zavriev S K. The genome anization of potato virus M RNA[J]. Journal of General Virology, 1991, 72: 914. [5] Robert R M, Paul K, Keese M J, et a1. Evolution and molecular biology of Luteovirus [J]. Annu. Rev. Phytopathol, 1990, 28: 341363. [6] Makko
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