常見緩沖溶液配制-展示頁
2025-07-06 14:39本頁面
【正文】 量取下列溶液，置于1 L燒杯中。 5. 高溫高壓滅菌后，室溫保存。 3. 按下表量加入濃鹽酸調(diào)節(jié)所需要的pH值。實驗室常用緩沖液配置方案1)1 M TrisHCl (, , )組份濃度：1 M TrisHCl配制量：1 L 配制方法： 1. g Tris置于1 L燒杯中。 2. 加入約800 ml的去離子水，充分攪拌溶解。PH值 濃HCl 約70ml 約60ml 約42ml 4. 將溶液定容至1 L。 注意：應(yīng)使溶液冷卻至室溫后再調(diào)定pH值，因為Tris溶液的pH值隨溫度的變化差異很大，溫度每升高1℃。1M Tris－HCl Buffer（，） 100ml 500mM EDTA() 20ml 2. 向燒杯中加入約800 ml的去離子水，均勻混合。 4. 室溫保存。 2. 加入約800 ml的去離子水，充分攪拌溶解。 4. 將溶液定容至1 L。 注意：應(yīng)使溶液冷卻至室溫后再調(diào)定pH值，因為Tris溶液的pH值隨溫度的變化差異很大，溫度每升高1℃。3H2O（ NaAc）置于100200ml燒杯中，加入月40ml的去離子水?dāng)嚢枞芙?4高溫高壓滅菌后，室溫保存。NaCl 8g KCl Na2HPO4 KH2PO4 2. 向燒杯中加入約800 ml的去離子水，充分攪拌溶解。 4. 高溫高壓滅菌后，室溫保存。 6)10 M 醋酸銨 組份濃度：10 M 醋酸銨配制量：100 ml配制方法： 1. g醋酸銨置于100～200 ml燒杯中，加入約30 ml的去離子水?dāng)嚢枞芙狻?3. mm濾膜過濾除菌。 注意：醋酸銨受熱易分解，所以不能高溫高壓滅菌。氯仿可使蛋白質(zhì)變性并有助于液相與有機相的分離，而異戊醇則有助于消除抽提過程中出現(xiàn)的氣泡。8）10％ (W/V) SDS組份濃度：10％ (W/V)SDS配制量：100ml配制方法： ，加入約80ml的去離子水，68℃加入溶解 ，室溫保存。 2. 稱取8 g NaOH小心地逐漸加入到燒杯中，邊加邊攪拌。 4. 將溶液轉(zhuǎn)移至塑料容器中后，室溫保存。 2. 室溫保存。 2. 加去離子水將溶液定容至1 L后，適量分成小份。 11）20％ (W/V) Glucose組份濃度：20％ (W/V) Glucose配制量：100 ml配制方法： 1. 稱取20 g Glucose置于100～200 ml燒杯中，加入約80 ml的去離子水后，攪拌溶解。 3. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。1M TrisHCl（） 25ml EDTA（） 20ml 20％Glucose（） 45ml dH2O 910ml 2. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。13） Solution II(質(zhì)粒提取用)組份濃度：200mM NaOH，1％(W/V)SDS配制量：500ml配制方法： ，置于500ml燒杯中 10％ SDS 50ml2N NaOH 50ml ，充分混勻 ，此溶液保存時間最好不要超過一個月 注意：SDS易產(chǎn)生氣泡，不要劇烈攪拌14）Solution III(質(zhì)粒提取用)組份濃度：3 M KOAc, 5 M CH3COOH配制量：500 ml配制方法： 1. 稱量下列試劑，置于500 ml燒杯中。 147g 3. 加去離子水將溶液定容至500 ml。15） M EDTA()組份濃度： M EDTA配制量：1 L 配制方法： g Na2EDTA 2. 加入約800 ml的去離子水，充分攪拌。 注意：，EDTA才能完全溶解。 5. 適量分成小份后，高溫高壓滅菌。16）1 M DTT組份濃度：1 M DTT配制量：20 ml配制方法： 1. g DTT，加入到50 ml塑料離心管內(nèi)。 3. 適量分成小份后，20℃保存。3H2O，加入到50 ml塑料離心管內(nèi)。 3. 適量分成小份后，20℃保存。分裝成小份貯存于20℃。分裝成小份貯存于20℃。10mg/ml牛血清蛋白(BSA）：加100
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