動物實驗技術與方法(參考版)
2025-05-02 04:54本頁面
【正文】 ?較大受試動物尸體需經過適當肢解后再進行焚燒 ?焚燒效果應以污物全部化為灰燼為標準 。 ?如實驗過程中懷疑受試動物是因其它疾病死亡 ，應及時查明原因 。 ?用過的廢墊料要裝入垃圾袋中或專用的墊料容器內 ， 注意防蠅 、 防滲漏 ， 并及時焚燒處理 。 （三）無害化處理 ?進行放射性實驗所產生的廢棄物 ， 如果屬于短半衰期且放射性較低的物品 ， 放置 610個半衰期后可以焚化處理 。 ?一次性使用的注射器 、 針頭 、 手套等物品使用后經消毒劑浸泡清洗 ， 毀形后按要求統一進行無害化處理 。 ?有機垃圾盛裝器應密封有蓋 ， 防滲漏 、 防蠅 、 防鼠 、 并便于搬運及消毒 。 ?實驗后收集的污物要用污物處理容器 ， 進行盛裝 。 ?如果是做動物感染實驗所產生的污水 ， 必須先徹底滅菌后方可排入污水儲水池進行消毒 。 ?動物實驗中的污水來自動物的尿糞液 、 籠器具洗刷 、 廢棄的消毒液 、 實驗中的廢棄的試液等 ， 并且使用量大 。 ? 萬一麻醉過量，應根據不同情況，積極采取措施，如給予蘇醒劑，或注射強心劑。 ? 注射時，一般要求緩慢，并隨時觀察動物的肌肉緊張性、角膜反射、去痛反射等指標。每次注藥前，應回抽，以防藥液誤注于血管內。 施行浸潤麻醉時，用皮試針頭先皮內注射，然后換局麻長針頭，由皮點進針，放射到皮點四周，繼續(xù)注射，直至要求麻醉區(qū)域的皮膚都被浸潤為止。浸潤麻醉是將藥物注射于皮內、皮下組織或手術野深部組織，以阻斷用藥局部的神經傳導，使痛覺消失。此法主要用于需麻醉 2小時以上的實驗，麻醉過程平穩(wěn)，但麻醉深度和使用劑量較難掌握和控制，一旦過量可引起血壓下降和呼吸抑制，可用戊四氮、可拉明等急救。 2．腹腔和靜脈給藥麻醉法 非揮發(fā)性麻醉劑如戊巴比妥鈉、硫噴妥鈉等巴比妥類藥物及水合氯醛、氨基甲酸乙酯等，可用腹腔或靜脈注射麻醉。如果呼吸停止，可進行人工呼吸，并配以咖啡因、可拉明等蘇醒劑，待恢復自主呼吸后再進行實驗。如實驗過程較長，可在其鼻部放棉花或紗布，不時滴加乙醚維持，也可用乙醚先麻醉后再用非揮發(fā)性麻醉劑維持麻醉。 目的：防止動物掙扎 ， 保持安靜 防止意外損傷 ， 便于操作 實驗動物的 麻醉 全 身麻醉 1%硫噴妥鈉 :15mg/kg， iv/ip 2%戊巴比妥 :40mg/kg， iv/ip 鹽酸氯胺酮 :40mg/kg， sc/im 復方氯胺酮 :， sc/im 速眠新 (846)注射液 每 Kg體重 : 雜種犬： 純種犬： — 貓、兔： — 羊、猴： — 鼠 ： — 麻醉方法 1．吸入法 乙醚、氯仿等揮發(fā)性麻醉劑用吸入法麻醉，適用于各種實驗動物。 尿液采集 (一 )代謝籠 動物排便時 ， 可通過籠子底部的大小便分離漏斗 ， 將尿液與糞便分開 ， 達到采集尿液的目的 。 (二 )膽汁的采集 采集膽汁需要施行手術 。經 6— 7天后可重復穿刺采血。于左側第 4肋間心尖博動最強處將針頭垂直刺入心臟，由于心臟的搏動，血液可自動進入注射器。 （ 4）斷頭采血 （ 5）心臟采血 狗股動脈取血方法 獼猴后肢靜脈取血方法 小白鼠斷頭取血方法 大白鼠頸靜脈取血方法 兔耳緣靜脈取血方法 狗頸靜脈取血方法 （ 6）心臟采血：將動物麻醉并仰臥固定置實驗臺上。需手術分離股動脈。如只進行一次取血，可采用摘眼球法。 鼠尾靜脈取血方法 （ 2） 眼眶后靜脈叢采血：操作者一手固定小鼠或大鼠，食指和拇指輕輕壓迫頸部兩側，使眶后靜脈叢充血，另一只手持毛細采血管，以 45℃ 從內眼角刺入，并向下旋轉，感覺刺入靜脈叢后，再向外邊退邊吸，當得到所需血量后，
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