香菇多糖的小腸吸收學士學位論文(編輯修改稿)
2024-07-22 03:18 本頁面
【文章內(nèi)容簡介】 %H202,保持pH 8～9，4h后終止反應，冷卻至室溫，加入3倍體積的無水乙醇，4000rpmmin1，離心24min，沉淀進行冷凍干燥。(二) 蒽酮硫酸法精確稱量在105℃干燥至恒重的無水葡萄糖50mg，置50mL容量瓶中定容搖勻，然后取5mL葡萄糖溶液置于50ml容量瓶中定容搖勻，mL1的葡萄糖標準液。%蒽酮試劑的配制，置50mL容量瓶中用80%硫酸定容，搖勻。小腸緩沖液組成：NaCl(L1)，KCl(L1)，CaCl2(L1)，NaHCO3(L1)，NaH PO3( gL1)，MgCl2(L1)。（注NaHCO3與CaCl2和MgCl2要分別事先配成溶液，以防生成沉淀?！”痉椒ǜ鶕?jù)香菇多糖與蒽酮在酸性條件下發(fā)生顯色反應的原理進行含量測定?？疾燧焱噭舛群头兴r間，反應以沸水浴15min，放置10min為宜，為了防止加入蒽酮試劑時硫酸放熱提前發(fā)生顯色反應，需在冰水浴中加入蒽酮試劑，最大吸收波長為625nm。，，，分別置于干燥試管中，，搖勻。沸水浴15min，靜置10min，于625nm處測定吸收值。﹑﹑，﹑﹑，搖勻，沸水浴15min后冷卻至室溫，以空白管調(diào)零，連續(xù)測定五次吸光度，計算RSD。，按上述方法顯色后每間隔15min測定一次吸光度，在2小時內(nèi)測定吸光度值，計算RSD。精密稱取葡萄糖對照品適量，﹑﹑ mgmL1高中低三個不同濃度，沸水浴15min后靜置至室溫，每個樣品分別測定3次吸光度，計算回收率。(三) 小腸吸收實驗 參照文獻方法[10]，選取健康大鼠，禁食24h（自由給水），用烏拉坦麻醉，立即打開腹腔，分離出小腸，放入小腸緩沖液中，用緩沖液沖洗小腸表面，并仔細清除漿膜層外面的脂肪組織。剪取大約6～7cm的一段小腸，用圓頭細玻璃棒將腸段翻轉(zhuǎn)使粘膜層在外，漿膜層在內(nèi)，洗凈內(nèi)容物，用手術線結扎腸段一端，另一端用手術線結扎在玻璃管上。，放入含有不同濃度香菇多糖小腸緩沖液的小試管中，通入空氣，置于水浴鍋中37℃保溫。在吸收開始后15 min, h,1 h, h,2 h,用取樣器取出小囊中的所有內(nèi)液,繼續(xù)實驗。樣品取出后放入離心管中4000轉(zhuǎn)min1離心5min，取上清液用蒽酮硫酸法進行顯色反應，測定樣品在625nm處的吸光度。根據(jù)吸光度計算香菇多糖含量，計算每個時間段香菇多糖的累積吸收量和吸收率。 分別取十二指腸﹑空腸和回腸，其中十二指腸（duodenum）：自幽門1 cm處開始；空腸（jejunum）：離幽門15 cm處開始；回腸（ileum）：離盲腸20 cm處開始，mL1，mL1，mL1， mgmL1的香菇多糖小腸緩沖溶液中，在吸收開始后15 min, h,1 h, h,2 h,用取樣器取出小囊中的所有內(nèi)液，繼續(xù)實驗。樣品取出后放入離心管中4000轉(zhuǎn)min1離心5min，取上清液用蒽酮硫酸法進行顯色反應，測定樣品在625nm處的吸光度，根據(jù)吸光度計算香菇多糖含量，計算每個時間段香菇多糖的累積吸收量和吸收率。，， mgmL1的香菇多糖溶液進行吸收實驗，分別在15 min, h,1h, h,2 h取樣，計算各個時間段的累積藥物吸收量和吸收率，考察吸收時間和給藥濃度對香菇多糖吸收的影響。結果與分析一、香菇多糖的純化(一) Sevage法去蛋白 圖1香菇多糖溶液 圖2 香菇多糖去蛋白效果 （二）雙氧水脫色 圖3 脫色后香菇多糖溶液 二、 蒽酮硫酸法（一）標準曲線的制備用吸收度(A )與濃度(C)進行線性回歸,得回歸方程如下: 圖4 蒽酮硫酸法標準曲線A=（r=），線性范圍：～mL1。（二）精密度測定結果表1蒽酮硫酸法的精密度測定結果(n=5) 次數(shù) 測得濃度（mgmL1）低 中 高 1 2 3 4 5 RSD(%) 可見高中低三個濃度的精密度良好。（三）穩(wěn)定性考察結果 在2小時內(nèi)吸光度值分別為：， ，，，RSD=%。兩個小時內(nèi)方法穩(wěn)定性很好。（四）回收率測定結果表2 回收率測定結果NO 對照品加入理論濃度 實測濃度 回收率（%） 平均回收率（%） （mgmL1） (mgmL1)1 2 3 4 5 6 7 8 9 %，RSD=%。三、小腸吸收實驗（一）外翻腸囊的制作圖5 腸段翻轉(zhuǎn)后模型圖6 小腸吸收裝置示意圖（二）吸收部位對香菇多糖吸收的影響表3 香菇多糖在小腸不同部位的累積吸收量（n=3）給藥 吸收 各時間段的累積吸收量（mg）濃度 部位（mgmL1） 15 30 60 90
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