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大腸桿菌基因組dna的提取方式-全文預覽

2025-07-09 12:57 上一頁面

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【正文】 osystemsStore(AppliedBiosystems產(chǎn)品倉庫)訂購所建議的材料。3)從單位下拉菜單中,選擇ng/181。L。(檢測預混液濃度)。5)確認ExcessReactionVolume(額外反應體積)字段中顯示10%。L。GeneExpressionAssays,則選擇Inventoried/MadetoOrder(庫存/定制)。2)從SelectTarget(選擇靶)窗格中,選擇RNaseP。查看反應設置在ReactionSetup(反應設置)屏幕上,選擇檢測類型(如果使用TaqMan試劑),然后查看為準備PCR反應、標準稀釋序列和樣本稀釋而計算的劑量。–如果正執(zhí)行一步法RTPCR擴增,則包括一個反轉(zhuǎn)錄步驟。StepOne系統(tǒng)支持10至30181。1)單擊選擇GraphicalView(圖形視圖)選項卡(默認)或TabularView(表格視圖)選項卡。(放置陰性對照)下拉菜單中,選擇UpperLeft(左上角)(默認)。6)選擇AllSample/TargetReactions(所有樣本/靶反應)以檢測所有樣本中的所有靶。4):(輸入樣本名)字段,然后輸入pop1(用于重復組1)。(根據(jù)需要填)2)單擊Howmanyreplicatesdoyouneed?(您需要多少次重復反應?)字段,然后輸入3。標準曲線應包含如下點:10000、5000、2500、1250和625。序列倍數(shù)用于計算標準曲線所有點中的數(shù)量。由于標準品數(shù)量的范圍會影響擴增效率計算,因此應仔細為您的檢測考慮標準品數(shù)量的適當范圍:–為了更準確地測量擴增效率,請使用大范圍的標準品數(shù)量,擴大到5個至6個對數(shù)級之間。建議每條標準曲線應至少有五個稀釋點。4)Next(下一步)。Green染料以檢測雙鏈DNA,則選擇SYBR。–如果要將JOETM染料加在您用于檢測靶的TaqMan探針的5′端,則選擇JOE。注意:SetUpStandards(設置標準品)復選框默認情況下已選取。1)單擊Howmanytargetsdoyouwanttoquantifyinthereactionplate?(您想在反應板中定量多少靶?)字段,然后輸入1(根據(jù)需要填)。–如果為PCR反應使用標準試劑(包括SYBRGreen試劑和TaqMan試劑),則選擇Standard(~2HourstoCompleteaRun)(標準(約2小時完成運行))。將Standard(標準)選為升降溫速度。引物設計用于擴增靶。切記!AppliedBiosystems不建議將TAMRATM染料隨StepOneTM系統(tǒng)用作熒光報告基團或淬火基團。TaqMan試劑包括兩個引物和一個TaqMan174。2)為試劑選擇TaqMan174。?標準品稀釋序列-一組用于構(gòu)建標準曲線的標準品稀釋液(例如,1:1:1:1:11:32)。從已知量的稀釋序列中構(gòu)建的標準曲線用于歸檔結(jié)果。Materials(方法和材料)屏幕上,選擇用于實驗的定量方法、試劑、升降溫速度和PCR模板。2)Barcode(條碼),然后輸入您的PCR反應板上的條碼。然后,算法將搜索擴增曲線上基線校準后歸一化報告熒光信號強度(deltaRn[?Rn]值)與閾值交叉的點。擴增曲線以圖形形式顯示在執(zhí)行的循環(huán)次數(shù)中檢測到的熒光。二、試劑盒法提取大腸桿菌基因組DNA。將溶液定容到500ml后,高溫高壓滅菌,室溫保存)3)蛋白酶K:(20mg蛋白酶K溶于1ml無菌雙蒸水,20℃?zhèn)溆茫?)CTAB/NaCl溶液:(5%w/v,需加熱到65℃使之溶解,然后室溫保存)實驗方法步驟將大腸桿菌接種到滅菌好的LB培養(yǎng)基中,一級培養(yǎng)過夜,以10%的接種量進行二級培養(yǎng),培養(yǎng)至對數(shù)期(46h)。CTAB(十六烷基三乙基溴化銨)是一種去污劑,可溶解細胞膜,它能與核酸形成復合物,在高鹽溶液中()是可溶的,當降低溶液鹽濃度到一定的程度()時,從溶液中沉淀,通過離心就可將CTAB核酸的復合物與蛋白,多糖物質(zhì)分開。SDS的作用機理是由于其能結(jié)合蛋白,中和蛋白的電性,使蛋白質(zhì)的非共價鍵受到破壞,失去二級結(jié)構(gòu),從而變形失活,蛋白酶K或鏈霉蛋白酶E均為光譜蛋白酶,其重要特性是能在SDS和EDTA(乙二胺四乙酸二鈉)存在的情況下保持很高的活性。實驗原理提取DNA的一般過程是將分散好的組織細胞在含十二烷基硫酸鈉(SDS)和蛋白酶K的溶液中消化分解蛋白質(zhì),再用酚和氯仿/異戊醇抽提分離蛋白質(zhì),得到的DNA溶液經(jīng)乙醇沉淀使DNA從溶液中析出。為獲得高純度DNA,操作過程中常加入RNaseA除去RNA。(攪拌溶解后,用5mol/,用20/50ml搖瓶分裝5瓶,包扎好,在121℃,105pa高壓下蒸汽滅菌20min.)2)TE緩沖液:1MTris溶液(,加ddH2O至1600ml,加熱溶解)(取1MTris溶液160ml用分析純鹽酸調(diào)至Ph=(),加ddH2O定容至200ml,高壓滅菌備用)TE緩沖液(10mMTrisHCl1MmEDTApH=,1MTrisHClBufferPH==。加30ulCTAB/NaCl溶液,混勻,65℃保溫20min加入300ul酚/氯仿/異戊醇抽提(25:24:1),5000rmp離心10min取上清液,加入300ul氯仿/異戊醇(24:1)抽提,5000rmp離心10min取上清液,加入300ul的異丙醇,顛倒混勻,室溫下靜止10min,沉淀DNA,5000rmp離心10min加500ul70%乙醇洗沉淀,5000rmp離心10min1棄上清液,待酒精揮發(fā)盡后加30ulTE溶解1溶解于20ulTE中,20℃保存。【實驗原理】在實時定量實驗中,反應是在PCR產(chǎn)物的擴增達到固定熒光水平時的循環(huán)期間時間點來描述的,而不是在固定循環(huán)次數(shù)后累積的PCR產(chǎn)物最終數(shù)量來描述。首先,軟件通過計算歸一化報告熒光信號強度(與基線循環(huán)相對應的Rn值)的數(shù)學趨勢,生成一個基線簡化擴增曲線。1)ExperimentName(實驗名稱)。(可不填)5)選擇Quantitation(定量)實驗類型6)Next(下一步)定義方法和材料在Methodsamp。標準曲線實驗確定樣本中靶序列的絕對量。?標準品-數(shù)量已知的樣本。陰性對照應不會擴增。Reagents(TaqMan試劑)。TaqMan探針設計用于雜交靶,并在擴增靶時產(chǎn)生熒光信號。SYBRGreen試劑包括兩個引物和SYBRGreen染料。如果使用SYBRGreen染料:選擇IncludeMeltCurve(包括解鏈曲線)以執(zhí)行擴增靶的解鏈曲線分析。–如果為PCR反應使用Fast試劑,則選擇Fast(~40MinutestoCompleteaRun)(快速(約40分鐘完成運行))。設置靶在Targets(靶)屏幕上,輸入您想在PCR反應板中定量的靶數(shù)量,然后為每個靶設置檢測。建議反應板中的每個靶檢測設置一條標準曲線。–如果要將FAMTM染料加在您用于檢測靶的TaqMan探針的5′端,則選擇FAM。–如果您正使用SYBR174。–如果您正使用SYBRGreen染料,則選擇None(無)。1)單擊Howmanypointsdoyouneedforeachstandardcurve?(每條標準曲線您需要多少個點?)字段,然后輸入5。3)為RNaseP(示例)檢測定義標準品數(shù)量范圍:(輸入起始量)字段,然后輸入10000。(選擇序列倍數(shù))下列菜單中,選擇1:2。4)查看StandardCurvePreview(標準品曲線預覽)窗格。1)單擊Howmanysamplesdoyouwanttotestinthereactionplate?(您想在反應板中檢測多少樣本?)字段,然后輸入2。建議對每個靶檢測進行三次陰性對照反應。(顏色)字段中的默認設置。7)在WellCount(反應孔數(shù))窗格中,確認存在:?6個未知反應孔U?15個標準品反應孔S?3個陰性對照反應孔N?24個空反應孔8)在ViewPlateLayout(查看檢
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