【正文】
方法的性能檢驗 ?實際樣品的檢測 提取條件的確定 ? 美國 FDA實驗室方法,氣相色譜質譜法采用甲醇提取,由于三聚氰胺在甲醇中溶解度很低,因此, FDA只將其作為定性篩選法,而其高效液相色譜法由于沒有凈化過程,對于基質復雜的飼料中三聚氰胺的測定效果不理想。 ? 我們主要采用中國檢科院的提取凈化方法 ? 主要改進在于提取時加入乙酸鉛溶液去除蛋白,而對于脂肪含量較高的寵物食品 (罐頭 )由于三聚氰胺在乙醚中不溶,采用乙醚脫脂后提取,獲得了滿意的結果,而且提取方法簡單,而對于寵物食品(干糧),稱取在索式提取器中用乙醚回流 6h去除脂肪,由于溫度高、時間長,回收率只有4060%,而直接用 1%的三氯乙酸溶液提取,回收率高于80%。 提取條件的確定 ? 本方法確定的提取條件 ?植物蛋白、飼料和寵物飼料(干糧)中三聚氰胺的提?。悍Q取 5g樣品(精確至 ),準確加入 50mL1%的三氯乙酸溶液,準確加入 2mL飽和醋酸鉛溶液。搖勻,超聲提取20min。靜止 2min,取提取液約 30mL轉入離心管,在10000rpm離心機上離心 5min。 ?寵物飼料( 罐頭 ): 稱取 5g樣品(精確至 ),加入50mL乙醚,搖床上 120轉 /分震蕩 1小時,棄去乙醚,再加入 50mL乙醚,搖床上 120轉 /分震蕩 1小時,棄去乙醚,其余步驟同上。 凈化條件的選擇 ?我們主要采用中國檢科院的提取凈化方法,使用了不同的凈化柱試驗了樣品的凈化效果。 ?我們對比了 OASIS MCX柱、 PCX和 LC18等幾種固相萃取柱,結果 LC18由于三聚氰胺難以保留,樣品添加沒有回收。只有 OASIS MCX和 PCX柱達到了良好的回收,回收率大于 80%。 ?我們確定的凈化條件為:固相萃取柱活化和上樣:分別用3ml甲醇, 3ml水活化柱,準確移取 10mL離心液分次上柱。再用 3ml水和 3ml甲醇洗滌固相萃取柱柱,抽近干后用 5%氨水甲醇溶液( ) 3ml洗脫。洗脫液于氮吹儀上 50℃ 氮吹至干,用 2+8甲醇水定容,過 ?m濾膜,濾液用于液相色譜測定。 mi n0 2 4 6 8 10mA U 5 0050100150200 D A D 1 A , S i g = 2 4 0 , 4 R e f = o f f ( 0 7 0 5 1 7 \ ME L A M0 3 1 . D )mi n0 2 4 6 8 10mA U 1 5 0 1 0 0 5 0050100150200 D A D 1 A , S i g = 2 4 0 , 4 R e f = o f f ( 0 7 0 5 1 7 \ ME L A M0 5 7 . D )儀器條件的選擇 ?HPLC條件的優(yōu)化 HPLC條件的優(yōu)化 ?流動相和色譜柱的選擇 ?檢測波長的選擇 流動相和色譜柱的選擇 ?根據(jù)有關文獻,我們分別采用乙腈:( 10mM庚烷磺酸鈉,10mM檸檬酸緩沖液) 10: 90、乙腈: 10mM庚烷磺酸鈉,10mM檸檬酸緩沖液 8: 92以及乙腈:( 10mM辛烷磺酸鈉,10mM檸檬酸緩沖液) 10: 90進行了實驗,我們發(fā)現(xiàn)采用 C8的柱子,使用乙腈:( 10mM庚烷磺酸鈉, 10mM檸檬酸緩沖液) 10: 90 可以達到使用 C18乙腈:( 10mM辛烷磺酸鈉,10mM檸檬酸緩沖液) 10: 90的保留水平,因此, 6min左右的保留時間既能有效的分析雜質,又能夠提高分析效率,因此,我們選用 C8色譜柱,流動相采用乙腈:( 10mM辛烷磺酸鈉, 10mM檸檬酸緩沖液) 10: 90,得到了滿意的結果。 檢測波長的選擇 ?將 10181。g/mL的三聚氰胺標準液進樣,在二極管陣列檢測器上掃描,波長從 200nm至400nm,見圖 1,結果顯示三聚氰胺在236nm處有最大吸收,各種文獻均采用 240 nm為分析波長,因此選定 240nm為檢測波長。 nm200 220 240 260 280 300 320 340 360 380mA U020406080100120 D A D 1 , 5 . 9 9 6 (1 2 8 mA U , ) o f ME L A M0 0 6 . D方法的性能檢驗 ?HPLC方法性能檢驗 HPLC方法性能檢驗 ?標準品的線性范圍 ?最低檢測濃度 ?儀器的精密度 ?方法的準確度、精密度和適用范圍 ?方法干擾試驗 標準品的線性范圍 ?準確移取三聚氰胺標準儲備液,用提取液依次稀釋,配制成濃度為 、 、 、 、 、 ,根據(jù)三聚氰胺的濃度和峰面積的關系,繪制線性關系曲線(見圖 2)。 標準品的線性范圍 A mo u n t [ u g / ml ]0 50A r e a0202240006000800010000 me l a mi