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正文內(nèi)容

質(zhì)粒dna的提取、純化和電泳檢測(cè)(專業(yè)版)

  

【正文】 將未知相對(duì)分子質(zhì)量的DNA樣品與已知相對(duì)分子質(zhì)量的標(biāo)準(zhǔn)DNA片段進(jìn)行電泳對(duì)照,觀察其遷移距離,就可以獲得該樣品的相對(duì)分子質(zhì)量的大小。膠液冷卻至60℃左右后需要加EB,EB是一種強(qiáng)烈的誘變劑,應(yīng)戴手套進(jìn)行操作。質(zhì)粒DNA純化過(guò)程中使用酚/氯仿/異戊醇混合液。冰浴使反應(yīng)更充分。葡萄糖還可以防止DNA受機(jī)械剪切力作用而降解。在pUC19 DNA對(duì)應(yīng)的條帶位置上可以看到模糊的DNA條帶,產(chǎn)生的原因是因?yàn)橄旅娴腄NA條帶中有些DNA因?yàn)檫w移速度較慢而使DNA條帶拉長(zhǎng)。在圖1中,可以看到泳道2與泳道17對(duì)應(yīng)的電泳圖中有一條清晰明亮的DNA條帶。④啟動(dòng)電泳,待觀察到負(fù)極有氣泡升起方可離開(kāi)。①配制2L1TAE:取40mL 50TAE,用雙蒸水將其稀釋至2L。 堿裂解/變性法提取質(zhì)粒DNA(1)取出一支滅菌的100mL離心管,標(biāo)記上組號(hào),用天平稱量其重量,并記錄為W1。(3)瓊脂糖濃度:瓊脂糖濃度直接影響凝膠的孔徑,一定大小的DNA片段在不同濃度的瓊脂糖凝膠中的泳動(dòng)速度不同。電泳是帶電物質(zhì)在電場(chǎng)中向著與其電荷相反的電極移動(dòng)的現(xiàn)象。質(zhì)粒特征的分析已被廣泛用于細(xì)菌種屬鑒定、耐藥性、毒力及同源性分析。堿變性提取法是一種應(yīng)用最為廣泛的制備質(zhì)粒DNA的方法。該方法操作簡(jiǎn)單,易于操作,一般實(shí)驗(yàn)室均可進(jìn)行。因而,凝膠電泳可用于分離、鑒定和純化DNA片段,是分子生物學(xué)的核心技術(shù)之一。常見(jiàn)的核酸電泳緩沖液有:TAE、TBE、TPE和MOPS等。(6)每100mg菌體量,加入(按菌體量接近的重新分組,溶液Ⅰ補(bǔ)平):①Ⅰ,充分渦旋振蕩,用溶液Ⅰ再次配平;②Ⅱ,輕柔顛倒混勻,冰浴3~5min;③Ⅲ,輕柔顛倒混勻,冰浴5min。(2)電泳上樣。在溶液中,由于DNA核酸有磷酸基而帶負(fù)電荷,在電場(chǎng)中向正極移動(dòng)。在泳道3與泳道16對(duì)應(yīng)的DNA帶中,圖中上面那條較細(xì)較暗的條帶是HindⅢ酶切后的pUC19,圖中下面那條較粗較亮的條帶是沒(méi)有被HindⅢ酶切的pUC19。某些點(diǎn)樣孔的邊緣(尤其是下邊緣)出現(xiàn)熒光,泳道泳道泳道泳道12等對(duì)應(yīng)的點(diǎn)樣孔下邊緣可明顯觀察到此現(xiàn)象。加入溶液Ⅱ時(shí),菌液變黏稠、透明,無(wú)菌塊殘留。注意此時(shí)沉淀不實(shí),寧愿少吸上清,也不要帶入沉淀,因?yàn)閹氲某恋碓谥蟛僮髦袩o(wú)法去除。氯仿也是蛋白阻斷劑,但強(qiáng)度弱于苯酚,其主要作用是將同水以極小比例互溶的苯酚萃取出來(lái)。配制瓊脂糖凝膠的電泳緩沖液應(yīng)與電泳時(shí)使用的緩沖液為同一批配制的。什么是奮斗?奮斗就是每天很難,可一年一年卻越來(lái)越容易。瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)質(zhì)粒DNA過(guò)程中使用上樣緩沖液(loading buffer),其含有30%甘油、%溴酚藍(lán)(BPB)、%二甲苯青FF。在實(shí)驗(yàn)的時(shí)候要注意,酚有強(qiáng)烈的腐蝕性,能損傷皮膚和衣物,使用時(shí)應(yīng)小心并且戴手套操作。TE溶液是pH緩沖液,含有10mM TrisHCl(pH )、1mM EDTA,呈弱堿性,有利于保護(hù)堿基對(duì),為DNA提供穩(wěn)定的生理狀態(tài)。溶液Ⅱ中的SDS遇到KAc后變成了十二烷基硫酸鉀(PDS),而PDS是水不溶的,因此發(fā)生了沉淀。加入溶液Ⅰ后溶液變渾濁,可劇烈振蕩,使菌體沉淀轉(zhuǎn)變成均勻的菌懸液,此時(shí)細(xì)胞尚未破裂,染色體不會(huì)斷裂。在pUC19對(duì)應(yīng)的DNA條帶位置處全班10個(gè)組均無(wú)明顯的DNA條帶。此DNA 溶液中已含有1Loading Buffer,可直接上樣。①開(kāi)啟電泳儀電源 。(12)分次加入1mL TE溶液并轉(zhuǎn)移到EP管中,得質(zhì)粒DNA粗提物。不同大小DNA片段的相對(duì)電泳遷移率在4~30℃內(nèi)無(wú)變化,一般瓊脂糖凝膠電泳多在室溫下進(jìn)行,%時(shí)凝膠很脆弱,最好在4℃下電泳以增加凝膠強(qiáng)度。DNA在瓊脂糖凝膠中的電泳遷移速率主要取決于下面六個(gè)因素:(1)樣品DNA分子的大?。弘娪緯r(shí),線性雙螺旋DNA分子是以頭尾位向前遷移的,其遷移速度與分子量(所含堿基)的對(duì)數(shù)值成反比,這是因?yàn)榇蠓肿佑懈蟮哪Σ磷枇Α#ɑ騈aAc)高鹽緩沖溶液調(diào)節(jié)堿性溶液至中性時(shí),變性的質(zhì)粒DNA可恢復(fù)原來(lái)的共價(jià)閉合環(huán)狀超螺旋結(jié)構(gòu)而溶解于溶液中;但染色體DNA不能復(fù)性,而是與不穩(wěn)定的大分子RNA、蛋白質(zhì)SDS復(fù)合物等一起形成纏連的、可見(jiàn)的白色絮狀沉淀。細(xì)菌質(zhì)粒的相對(duì)分子質(zhì)量大小從1kb至200kb以上不等。關(guān)鍵詞:質(zhì)粒DNA、堿變性提取法、質(zhì)粒DNA的純化、DNA凝膠電泳質(zhì)粒是細(xì)菌細(xì)胞中與主染色體共存、可自主復(fù)制的一段大多數(shù)呈環(huán)形的DNA。染色體DNA的氫鍵斷裂,雙螺旋結(jié)構(gòu)解開(kāi)而變性;質(zhì)粒DNA的大部分氫鍵斷裂,但超螺旋共價(jià)閉合環(huán)狀的兩條互補(bǔ)鏈不會(huì)完全分離。核酸在溶液中由于磷酸基而帶負(fù)電荷,在電場(chǎng)中向正極移動(dòng)。(6)溫度:DNA在瓊脂糖凝膠電泳中的行為受堿基組成和凝膠溫度影響不明顯。(11)重復(fù)70%乙醇洗滌一次,37℃風(fēng)干5~10min。(3)凝膠電泳與DNA分離。每次取6μL電泳時(shí),每條帶的DNA量約為50 ng,其中5 kbp條帶的DNA量約為其他條帶的3倍(150ng),顯示亮帶。另外泳道11對(duì)應(yīng)的電泳圖中也可以看到一條較暗的pUC19 DNA條帶。溶液Ⅰ中含有50mM葡萄糖、25mM TrisHCl(pH )、10mM EDTA。加入溶液Ⅲ時(shí),會(huì)
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