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限制性內(nèi)切酶酶切的常見問題及解決方法(完整版)

2025-02-13 11:37上一頁面

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【正文】 液中加入 底物 DNA(通常為 λDNA ),調(diào)節(jié)溫度至最適反應(yīng)溫度,溫育 60分鐘。 大多數(shù)星號活性是可以控制的,做酶切反應(yīng)時一般不考慮這方面的因素。這樣可以避免過度消化以及過高的甘油濃度。當然,我們大多數(shù)戰(zhàn)友,包括我 自己,考慮最多的是 “ 堿基個數(shù) ” ,對 “ 堿基組成 ” 的考慮通常是采用隨機,或兼顧引物 Tm及 GC%上。當最終反應(yīng)液中甘油濃度大于 12%時,某些限制酶的識別特異性降低,從而產(chǎn)生星活性,更高濃度的甘油會抑制酶活 性。 7. 當要用兩種或兩種以上限制酶切割 DNA時,如果這些酶可以在同種緩沖液中作用良好,則兩種酶可同時切割,如果這些酶所要求的緩沖液有所不同,則可采用以下兩種替代方法: ① 先用在低離子強度的緩沖液中活性高的酶切割 DNA,然后加入適量 NaCl及第二種酶,繼續(xù)反應(yīng); ② 使用能夠 使多數(shù)內(nèi)切酶均表現(xiàn)較高活性的單種緩沖液。 37℃ 或需長時間保溫時,可加入礦物油覆蓋在反應(yīng)液上以減少水分蒸發(fā)。 問題 原因 解決辦法 DNA完全沒有被內(nèi)切酶切割 1) 內(nèi)切酶失活 標準底物檢測酶活性 2) DNA不純,含有 SDS,酚, EDTA等內(nèi)切酶抑制因子 將 DNA過柱純化,乙醇沉淀 DNA 3) 條件不適(試劑、溫度) 檢查反應(yīng)系統(tǒng)是否最佳 4) DNA酶切位點上的堿基被甲基化 換用對 DNA甲基化不敏感的同裂酶酶解,重新將質(zhì)粒 DNA轉(zhuǎn)化至 dcm, dam基因型的細菌菌株 5) DNA酶 切位點上沒有甲基化(如 Dpn I) 換用不同切割非甲基化位點的同裂酶消化 DNA(如 San3A I代替 Dpn I),重新將質(zhì)粒轉(zhuǎn)至 dcm+ dam+菌株中擴增 6) DNA位點上存在其它修飾 將 DNA底物與 λDAN 混勻進行切割驗證 7) DNA不存在該酶識別順序 換用其它的酶切割 DNA或過量酶消化進行驗證 DNA切割不完全 1) 內(nèi)切酶活性下降 用 510 倍量過量消化 2) 內(nèi)切酶稀釋不正確 用酶貯藏液或反應(yīng)緩沖液稀釋酶 3) DNA不純,反應(yīng)條件不佳 同上 4) 內(nèi)切酶識別的 DNA位點上的堿基被 甲基化或存在其它修飾 同上 5) 部分 DNA溶液粘在管壁上 反應(yīng)前離心數(shù)秒 6) 內(nèi)切酶溶液粘度大,取樣不準 將內(nèi)切酶稀釋,增大取樣體積 7) 酶切后 DNA粘末端退火 電泳前將樣品置 65℃ 保溫 510分鐘,取出后置冰浴驟冷 8) 由于反應(yīng)溶液、溫度、強烈振蕩使內(nèi)切酶變性 使用標準反應(yīng)緩沖液及溫度,避免強烈振蕩 9) 過度稀釋使酶活性降低 適當稀釋酶液,反應(yīng)液稀釋的酶不能貯藏 10)反應(yīng)條件不適 使用最佳反應(yīng)體系 11)識別位點兩側(cè)插入了可影響酶切效率的核酸順序 加大酶量 510倍 DNA片段 數(shù)目多于理倫值 1) 內(nèi)切酶星狀活性 檢查反應(yīng)條件:甘油濃度大于 12%,鹽度過低, Mn2+的存在及酶: DNA值過大均均可導(dǎo)致星狀活性,降低酶的用量 2) 其它內(nèi)切酶污染 用 λDNA 作底物檢查酶切結(jié)果 3) 底物中含其它 DNA雜質(zhì) 電泳檢查 DNA,換用其它酶切,純化 DNA片段 酶切后沒有觀察到 DNA片段的存在 1) DNA定量錯誤(如 RNA含量較高) 用 RNA酶 A(無 DNA酶) 100ug/ml 消化 DNA樣,酚抽提后沉淀溶解,定量 2) 在酶切反應(yīng)液中形成非特異的沉淀 在反應(yīng)前透析 DNA樣品或用酒精沉淀 二次 內(nèi)切酶保存期內(nèi)快速失活 1) 保存溫度不合適 內(nèi)切酶貯藏在含 50%甘油的貯藏液中,應(yīng)在 20℃ 低溫保存 2) 以稀釋形式保存 稀釋酶液不宜長期存放,應(yīng)一次使用 3) 貯藏緩沖液不適當 使用廠家推薦的貯藏緩沖液 4) 低蛋白濃度 內(nèi)切酶與 500ug/ml的 BSA一起保存 電泳后 DNA片段的帶型彌散,不均一 1) DNA上結(jié)合有蛋白質(zhì) 電泳前上樣液 65℃ 加熱 5min,并加入 %的 SDS,酚 /氯仿抽提純化 2) 內(nèi)切酶中含有 DNA外切酶 減少酶用量或消化時間,換用新包裝的酶 酶切后的 DNA片段連接效率低 1) 含磷酸鹽的濃度高 透析,乙醇沉淀去除磷酸鹽 2) 內(nèi)切酶失活不全或含有 ATP酶 延長滅活時間或用酚抽提,乙醇沉淀回收 DNA 3) 平末端連接 加大 T4 DNA Ligase用量 4) 外切酶污染 減少酶用量,縮短保溫時
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