【正文】 泳，必須用聚丙烯酰胺做介質(zhì)。在低電壓時，線性DNA分子的泳動率與電壓成正比。(3)電場強度：電泳場兩極間單位支持物長度的電壓降即為電場強度或電壓梯度。瓊脂糖凝膠的孔徑大，可以分離長度為100bp至近60kb的DNA分子；聚丙烯酰胺凝膠的孔徑小，可分離小片段(5～500bp)DNA，效果最好。 (2)支持物介質(zhì)：DNA的凝膠電泳常使用兩種支持材料：瓊脂糖和聚丙烯酰胺凝膠。三者之間的遷移速率，一般為Ⅰ型Ⅲ型Ⅱ型，但是有時也會出現(xiàn)相反的情況，因為與瓊脂糖濃度、電流強度、離子強度及溴乙錠染料含量有關(guān)。在檢測未知DNA分子量時，DNA分子的空間構(gòu)型不同，即使相同的分子量其遷移率也不同。一般來說顆粒帶電荷的密度愈大，泳動速率愈快；顆粒物理形狀愈大，與支持物介質(zhì)摩擦力越大，泳動速度越小。值得注意的是，等長度的單鏈DNA和雙鏈DNA在中性或堿性凝膠中的遷移率大致相等。不同大小和構(gòu)象的核酸分子的電荷密度大致相同，在自由泳動時，各核酸分子的遷移率區(qū)別很小，難以分開。 與蛋白質(zhì)分子類似，核酸分子也是兩性解離分子。實驗原理：帶電荷的物質(zhì)在電場中的趨向運動稱為電泳。 6．抽提產(chǎn)物經(jīng)電泳分離、EB染色后，在紫外線燈下可觀察到三個條帶，自前往后分別為：超螺旋、線性及開環(huán)質(zhì)粒DNA。否則，用TE緩沖液溶解DNA時，既困難又不完全。加入溶液II混勻之后,一定在冰上放置,不要搖動,對于溶液溶液III,同樣處理! 2. 加入溶液I之前,注意將離心管倒扣過來,將培養(yǎng)基完全流出. 2．加乙醇沉淀DNA時，要把離心管加蓋倒翻搖動4～5次，注意觀察水相與乙醇之間沒有分層現(xiàn)象之后，才可以放在冰箱中去沉淀DNA,以獲得更多的DNA。去掉染色體DNA最為重要，也較困難，因為在全部提取過程中，只有一次機會去除染色體DNA，其關(guān)鍵步驟是加入溶液Ⅱ與溶液Ⅲ時，控制變性與復性操作時機，既要使試劑與染色體DNA充分作用使之變性，又要使染色體DNA不斷裂解成小片段，從而能與質(zhì)粒DNA相分離。 14．將該管質(zhì)粒保存于20℃?zhèn)溆谩?3 ％瓊脂糖凝膠電泳，EB染色后觀察抽提結(jié)果。 11．12 000r／min離心10min，去上清，沉淀用70％乙醇洗滌一次，空氣中晾干。 8．加人等體積氯仿，振蕩混勻，12 000r／min離心2min，上清轉(zhuǎn)移至另一個Eppendorf管中。 7．加入等體積酚／氯仿(1:1)，振蕩混勻，12 000r／min離心2min，上清轉(zhuǎn)移至另一個Eppendorf管中。 5．加入150μl預冷的溶液Ⅲ，溫和振蕩10s，冰浴5min。 3．將細菌沉淀重懸于100μl預冷的溶液工中，強烈振蕩混勻。6．氯仿 異戊醇(24:1)7．無水乙醇8．RNaseA(10mg／ml)9．3mol／L NaAc()10．TE 10mmol／L TrisC1() 1mmoI／L EDTA材料 含有質(zhì)粒(pNTEEGFP, pEGFPN3)的大腸桿菌DH5a.操作步驟 1．挑取瓊脂培養(yǎng)板上的含有pNTEEGFP, pEGFPN3質(zhì)粒的單菌落，接種至5ml LB培養(yǎng)液(含Kana 50μg／m1)，37℃振蕩培養(yǎng)過夜。實驗內(nèi)容：試劑(1L)細菌培養(yǎng)用蛋白胨 10g細菌培養(yǎng)用酵母粉 5gNaCl 10g用10mol／L ，高壓蒸氣滅菌, 4℃貯存.2．溶液Ⅰ，可成批配置，滅菌后4℃貯存。抽提過程完成后的水溶液中仍有痕量的酚、氯仿等，可用乙醇沉淀的方法將它們除去。氯仿／異戊醇的蛋白質(zhì)變性能力較弱，主要用于含酚試劑處理后的抽提。蛋白質(zhì)可通過酚、酚／氯仿、氯仿／異戊醇，使蛋白質(zhì)變性劑而除去，同時，氯仿有強烈的溶脂傾向，對于在除去蛋白質(zhì)的同時去除脂質(zhì)類雜質(zhì)很有好處。純化的步驟就是有針對性地將它們?nèi)コ?。再當pH調(diào)回中性時單鏈DNA互相纏繞且與蛋白質(zhì)結(jié)合生成網(wǎng)絡(luò)狀大分子，而超螺旋的質(zhì)粒發(fā)生復性反應(yīng)后仍是小分子，通過離心的方法很容易將二者分開，達到分離的目的。堿法的分離原理如下：大腸桿菌的染色體約有4700kb長，在處理細胞過程中都斷裂成不同長度的雙鏈DNA片段。常用的離子型去污劑是SDS、非離子型去污劑有Triton X100等。對于不同的菌要選用不同的方法，通常有煮沸法、非離子型去污劑法、堿性SDS法(簡稱堿法)等。本實驗選做的是堿法。實驗原理：質(zhì)粒DNA的抽提是基因工程操作中最常用與最基本的技術(shù)，現(xiàn)已有多種成熟的方案可供選擇。由于分子生物學技術(shù)和生物技術(shù)的快速發(fā)展，加之我們是第一次這樣系統(tǒng)地給學生開設(shè)生物技術(shù)大試驗課程，許多工作還處于不斷探索的過程中，難免有不妥和疏漏之處，懇切期望讀者提出寶貴意見，以利不斷修正完善。在使用過程中，可根據(jù)不同的層次適當增減。 雖然目前的分子生物學實驗教材版本眾多，但針對本科生的生物技術(shù)大實驗教材尚無出版。學生基本技能和動手能力的培養(yǎng)都離不開實驗室，離不開實驗課上的訓練，很多理論上的原理都需要到實驗課上去驗證，很多理論上的知識都需要到實驗課上去實踐。分子生物學技術(shù)已廣泛滲透和應(yīng)用到生物學、遺傳學、細胞學、微生物學、進化學、腫瘤學、免疫學、藥理學、發(fā)育學、病毒學、神經(jīng)生物學、生藥學、法醫(yī)學等與基礎(chǔ)醫(yī)學和臨床醫(yī)學有關(guān)的研究領(lǐng)域。分子生物學實驗技術(shù)突飛猛進，日新月異?！渡锛夹g(shù)大實驗》實驗指導書前 言《生物技術(shù)大實驗》是為生物技術(shù)專業(yè)本科高年級學生開設(shè)的綜合實驗課程，是在普通生物學實驗、生物化學實驗、微生物實驗、細胞生物學和遺傳學實驗的基礎(chǔ)上的綜合實驗課程。該實驗課程偏重于分子生物學實驗教學，通過此實驗課程，學生不僅學習到最基本的分子生物學技術(shù)，而且學習到前沿的生物技術(shù)。分子生物學技術(shù)的廣泛應(yīng)用，在20世紀下半葉對生命科學的進步產(chǎn)生了舉世公認的巨大推動作用，而且對人們的生活和整個社會的發(fā)展亦產(chǎn)生了巨大的沖擊和影響。21世紀將更是分子生物學技術(shù)快速發(fā)展的時期，由此引起的生物技術(shù)革命并將更加深刻地影響社會的發(fā)展。而實驗課教材或?qū)嶒炛笇情_好實驗課的基本條件之一。為了加強本學科的教材建設(shè)，促進本學科實驗課的開設(shè)，我們參考了國內(nèi)外最新的有關(guān)分子生物學實驗技術(shù)的專著，根據(jù)我校學生的特點及我們自己現(xiàn)有的基礎(chǔ)和條件，特選擇了部分實驗內(nèi)容，并結(jié)合我們的經(jīng)驗與體會，匯編成了生物技術(shù)大實驗實驗指導書，以供參考。同時，對于新近產(chǎn)生和應(yīng)用前景廣闊的生物芯片技術(shù)、RNAi技術(shù)和蛋白質(zhì)組研究等，限于我們目前的條件，只能作些演示或作為動態(tài)給以介紹，條件一經(jīng)成熟，即行開設(shè)。 編 者目 錄實驗一 質(zhì)粒的提取和純化 ……………………………………………. 3實驗二 質(zhì)粒DNA的電泳和純度檢測…………….……………………..6實驗三 PCR產(chǎn)物的TA克隆……………………………………………...9實驗四 感受態(tài)大腸桿菌細胞的制備…………………………………...12實驗五 重組DNA轉(zhuǎn)化大腸桿菌…………………………………........12實驗六 PCR擴增基因特異片段………………………………………..15實驗七 DNA片段的回收及純化………………………………………..19實驗八 PCR法快速鑒定重組載體……………………………………...22實驗九 限制性內(nèi)切酶酶切法鑒定重組質(zhì)?！?..24實驗十 外源基因在大腸桿菌中的表達及其檢測……………………….28實驗十一 RNA的提取及其純度檢測……………………………………32實驗十二 逆轉(zhuǎn)錄PCR（RTPCR）擴增基因特異片段…………………..35實驗十三 DNA探針制備……………………………………………..…38實驗十四 Southern印跡雜交……………………………………………41實驗十五 Northern印跡雜交……………………………………………44實驗十六 熒光原位雜交（FISH）技術(shù)…………………………………47實驗十七 外源基因在哺乳細胞中的表達及其檢測…………………...50實驗十八 生物芯片技術(shù)………………………………………………...53實驗十九 RNAi技術(shù)……………………………………………………56實驗二十 蛋白質(zhì)組技術(shù)………………………………………………...58附錄 基因工程基本技術(shù)路線…………………………………………….60實驗一 質(zhì)粒的提取和純化實驗目的：了解堿裂解法制備質(zhì)粒的原理，掌握質(zhì)粒的小量制備方法。最常用的有利用堿性條件下質(zhì)粒DNA與染色體DNA變復性的不同進行分離的堿法；利用酸性、低離子強度時超螺旋在水相中，開環(huán)、線型分子在酚相中進行分離的酸酚法；利用羥基磷灰石在特定的條件下(8mol／L尿素，／L磷酸緩沖液pH＝)只吸附雙鏈DNA的羥基磷灰石法(在上述條件下染色體DNA均成單鏈，質(zhì)粒DNA保持雙鏈)等。1. 裂解細胞 裂解細胞是指通過溶菌酶、去污劑等試劑破裂細胞壁與膜的過程。三種方法比較而言，非離子型去污劑法較溫和，適用于抽提10kb左右的質(zhì)粒；而煮沸法與堿性SDS法相對較劇烈，只能抽提小于10kb的質(zhì)粒。2．分離 即將質(zhì)粒DNA和染色體DNA分離。當溶液的pH調(diào)到大于12時雙鏈DNA中的氫鍵被破壞，于是染色體DNA的雙鏈分離成單鏈；而超螺旋狀態(tài)的質(zhì)粒DNA僅僅是氫鍵被破壞，并只發(fā)生部分雙鏈解離成單鏈的變化。3．純化 細胞裂解液中的雜質(zhì)除了染色體DNA外還有各種細胞壁、膜碎片、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)類物質(zhì)及RNA。RNA可用牛胰Rnase A分解除去。氯仿還能將微量的、溶于DNA水溶液的酚抽提掉，而微量的酚對于以后的酶切、轉(zhuǎn)化等過程都會產(chǎn)生不利影響。正確的去除蛋白質(zhì)雜質(zhì)的過程應(yīng)該是酚一酚+氯仿（(1:1)）一氯仿（或氯仿／異戊醇24:1)，處理，根據(jù)實驗情況也可考慮省略第一或第二步，但切記不可將氯仿（氯仿／異戊醇）的處理步驟省略掉。用無水乙醇沉淀的特點是能將DNA進行濃縮，且同時也更換了整個緩沖系統(tǒng)，但DNA也有一定的損失。葡萄糖50mmol／LTrisC1()25mmol／LEDTA10mmol／L3．溶液Ⅱ(新鮮配制)NaOH ／L SDS 1％4．溶液Ⅲ5mol／L KAc60ml冰醋酸水配制好的溶液Ⅲ含3mol／L鉀鹽，5mol／L 醋酸()卡那霉素(Kana): 50mg/ml, 過濾除菌.5．重蒸酚 市售苯酚蒸餾純化(收集179～181℃之間的酚)后，用TE飽和，4℃保存。 2．，12 000r／min離心2min，棄上清。 4．加入200μl溶液Ⅱ，蓋嚴管蓋，輕輕顛倒混勻5次，冰浴5min。 6．12 000r／min 室溫離心5min， Eppendorf管中?！咀⒁狻糠泳哂懈g性，操作時小心。 10．加入2倍體積預冷無水乙醇20℃沉淀10min。 12．加入20μl TE溶解質(zhì)粒DNA，加入RNaseA，終濃度20μg／m1 37℃?！咀⒁狻縀B為致癌物，操作時一定要戴乳膠或一次性手套。注意事項 1．該實驗成功的標志是把染色體DNA、蛋白質(zhì)與RNA去除干凈，獲得一定得率的質(zhì)粒DNA。這就要求試劑與溶菌液充分搖勻，搖動時用力適當，一般來說當溶液Ⅰ加入時可用力振蕩幾次，因為此時細菌還沒有與堿和SDS作用，染色體DNA尚未釋放，不必擔心其分子斷裂，加入SDS后，則要注意不能過分用力振蕩，溫和混勻,但又必須讓它反應(yīng)充分。 3．乙醇沉淀DNA離心后，要把離心管四周的上清液抽干或自然揮發(fā)(可將離心管倒置于濾紙上以盡量讓管內(nèi)液體流出)。 4．為了得到純凈的DNA樣品和清晰的電泳條帶，加入1μl RNA酶，將管置50℃水浴箱內(nèi)30min，消化RNA?！舅伎碱}】堿法提取質(zhì)粒的原理是什么？【課外閱讀】高純度質(zhì)粒DNA的提取,參閱Qiagen公司說明書,網(wǎng)站:實驗二 質(zhì)粒DNA的電泳和純度檢測實驗目的：掌握DNA瓊脂糖電泳技術(shù)，了解紫外分光光度法測定DNA濃度和純度的原理。其中，凝膠電泳由于其操作簡單、快速、靈敏等優(yōu)點，使它成為分離、鑒定和提純核酸的首選標準方法。堿基上的氨基基團解離，而三個磷酸基團中只有第一個磷酸解離，整個分子帶正電荷，在電場中向負極泳動；～，堿基幾乎不解離，磷酸全部解離，核酸分子帶負電荷，向正極移動。所以采用適應(yīng)濃度的凝膠介質(zhì)作為電泳支持物，發(fā)揮分子篩的功能，使得分子大小和構(gòu)象不同的核酸分子泳動率出現(xiàn)較大差異，達到分離的目的。 1．影響泳動的四大因素 (1)影響泳動的首要因素是電泳樣品的物理性質(zhì)：包括電荷多少、分子大小、顆粒形狀和空間結(jié)構(gòu)。即泳動率與顆粒的分子大小，介質(zhì)粘度成反比；與顆粒所帶電荷成正比。如質(zhì)粒DNA存在閉環(huán)(Ⅰ型，CC)，單鏈開環(huán)(Ⅱ型，OC)和線性(Ⅲ型，L)。當膠濃度較高或電場強度較大時，Ⅰ型DNA與Ⅲ型DNA互換位置，而Ⅱ型DNA總是遷移最慢。通過這兩種介質(zhì)的濃度變化調(diào)整所形成凝膠的分子篩網(wǎng)孔大小，分離不同分子量的核酸片段。因此，選用不同的凝膠種類和濃度可以分辨大小不同的DNA片段。電場強度愈大，帶電顆粒的泳動速率愈快，但凝膠的有效分離范圍隨電壓的增大而減小。一般凝膠電泳的電場強度不超過5V／cm；～／cm電泳過夜，以取得較好的分辨率和整齊的帶型。(4)緩沖液離子強度：緩沖液是電泳場中的導體，它的種類、pH值、離子濃度直接影響電泳的效率。緩沖液的pH值直接影響DNA解離程度和電荷密度，緩沖液pH值與DNA樣品的等電點相距越遠，樣品所攜帶電荷量越多，泳動速度越快。緩沖液的離子強度與樣品泳動速度成反比，～。核酸電泳常用的指示劑有是溴酚藍，溴酚藍呈藍紫色，分子量為670Da，在不同濃度凝膠中，遷移速度基本相同，它的分子篩效應(yīng)小，近似于自由電泳，故被