動物實驗技術(shù)與方法(更新版)
【正文】 頭，由皮點進針，放射到皮點四周，繼續(xù)注射，直至要求麻醉區(qū)域的皮膚都被浸潤為止。 ?動物實驗中的污水來自動物的尿糞液 、 籠器具洗刷 、 廢棄的消毒液 、 實驗中的廢棄的試液等 ， 并且使用量大 。 ?一次性使用的注射器 、 針頭 、 手套等物品使用后經(jīng)消毒劑浸泡清洗 ， 毀形后按要求統(tǒng)一進行無害化處理 。 ?較大受試動物尸體需經(jīng)過適當(dāng)肢解后再進行焚燒 ?焚燒效果應(yīng)以污物全部化為灰燼為標(biāo)準(zhǔn) 。 （三）無害化處理 ?進行放射性實驗所產(chǎn)生的廢棄物 ， 如果屬于短半衰期且放射性較低的物品 ， 放置 610個半衰期后可以焚化處理 。 ?如果是做動物感染實驗所產(chǎn)生的污水 ， 必須先徹底滅菌后方可排入污水儲水池進行消毒 。每次注藥前，應(yīng)回抽，以防藥液誤注于血管內(nèi)。 2．腹腔和靜脈給藥麻醉法 非揮發(fā)性麻醉劑如戊巴比妥鈉、硫噴妥鈉等巴比妥類藥物及水合氯醛、氨基甲酸乙酯等，可用腹腔或靜脈注射麻醉。 尿液采集 (一 )代謝籠 動物排便時 ， 可通過籠子底部的大小便分離漏斗 ， 將尿液與糞便分開 ， 達到采集尿液的目的 。 （ 4）斷頭采血 （ 5）心臟采血 狗股動脈取血方法 獼猴后肢靜脈取血方法 小白鼠斷頭取血方法 大白鼠頸靜脈取血方法 兔耳緣靜脈取血方法 狗頸靜脈取血方法 （ 6）心臟采血：將動物麻醉并仰臥固定置實驗臺上。采血結(jié)束時 ,傷口消毒并壓迫止血。 （ 1）小鼠和大鼠 ： 常采用尾靜脈注射。皮下注射劑量為 皮下注射一般選取皮下組織疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在頸后肩胛間、腹部兩側(cè)作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮下注射：貓、犬則在大腿外側(cè)作皮下注射。灌胃針插入時應(yīng)無阻力，如有阻力或動物掙扎則應(yīng)退針或?qū)⑨槹纬觯悦鈸p傷、穿破食道或誤入氣管。 兔的抓取方法 貓的抓取與固定方法 布制豬固定帶 豬的懸吊式固定 為了觀察藥物對機體功能、代謝、形態(tài)的影響，需要將藥物注入實驗動物體內(nèi)。上述配制好的溶液 5～ 7ml可用于 15 12cm2皮膚的脫毛。兔號牌則固定在耳朵上。 動物外觀健康檢查 編號標(biāo)記 目的：為了分組 要求：清晰、耐久、簡便、適用 顏料標(biāo)記 顏料標(biāo)記適應(yīng)于較大量的大、小鼠等小動物的編號。 ?皮毛：有無光澤、出血、干燥； ?眼：有無眼屎、流淚、白內(nèi)障、角膜損傷等； ?耳：有無外傷、耳殼曲折、中耳炎等； ?四肢：有無彎曲、脫臼、外傷、關(guān)節(jié)炎； ?肛門：有無下痢、血便、脫肛等。 ?號牌 將不銹鋼或鋁質(zhì)號牌固定在狗或猴的鏈條或頸圈上。 常用于兔及小鼠等小型動物的脫毛。因家兔耳大，故人們常誤認為抓其耳可以提起，或有人用手挾住其腰背部提起均為不正確的操作。左手固定鼠，右手持灌胃器，將灌胃針從鼠的右口角插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到達膈肌位置。拔針時，以手指捏住針刺部位，可防止藥液外漏。但排泄較快，作用時間較短。 先將動物固定，將鼠尾浸在 45℃ 左右溫水中幾分鐘或用酒精棉球涂擦鼠尾 ,使尾部血管充盈 ,剪去尾尖1— 2mm(小鼠 )或 3— 5mm(大鼠 ),使血液順血管壁自由流入試管或用血紅蛋白吸管吸取。小鼠的一次采血量可達 ，大鼠可達。 (三 )胰液的采集 胰液的采集基本同膽汁的采集 。因乙醚易引起上呼吸道分泌物增多，導(dǎo)致窒息，可先注射阿托品預(yù)防。根據(jù)實驗操作要求的深度，可按皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的順序，依次分別注入麻藥，以達到浸潤神經(jīng)未梢的目的。 ?實驗室排出的污水應(yīng)首先集中在貯水池中進行消毒 。 絕不可自行處理和隨意扔掉 。 四、廢棄動物及動物尸體無害化處理 Thanks
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