外文翻譯--運用實時pcr技術(shù)監(jiān)測生物浸出黃銅礦中的嗜熱微生物的數(shù)量-文庫吧在線文庫
【正文】 產(chǎn)物。該特定的片段進行擴增，然后用 ％瓊脂糖凝膠電泳檢查和溴化乙錠染色，以確保 PCR產(chǎn)物即引物特異性和尺寸。固體（集中和自由的細胞）是從 5毫升的樣本在 12020 g離心 10分鐘提取基因組 DNA溶于 TE的 60微升（ 10 mM的的 Tris HCl， pH值 ， mM的 EDTA）的。 理化分析 溶液中銅，鐵的總濃度測定用原子吸收光譜法。根據(jù)設(shè)計，數(shù)目相等細胞（約 1 107細胞毫升，每 1株），按順序接種于搖瓶。被粉碎的礦物然后通過一個有 75微米孔徑篩。 MgSO4 7H2O, . StarkyS medium (in g l?1):(NH4)2SO4, 3。 caldus S2的是培養(yǎng)在 Starky basal salt 培養(yǎng)基中以硫的作為能源，初始 pH為 。 2020年），嗜熱號應(yīng)變母語（周等人。 2020年，沖部和約翰遜 2020年）。為了優(yōu)化操作條件，提高浸出效率，有必要讓溫和的嗜熱嗜酸最佳組合和監(jiān)測反應(yīng)溫度， pH值等參數(shù)，來反應(yīng)這些微生物的種群動態(tài)。）我們還發(fā)現(xiàn)，從礦山酸性排水中富集的溫和的嗜熱微生物有類似的群落結(jié)構(gòu)。 如今，出現(xiàn)對應(yīng)用浸出礦物硫化物在混合培養(yǎng) 4050176?；艨怂沟?。 引言 用嗜酸性微生物從礦石中溶出金屬部分和隨后的恢復(fù)金屬形式的解決方案被稱為生物浸出（ Rohwerder 等人。用 LN和一個古菌 Ferroplasma搖瓶培養(yǎng)在 45℃孵育。嗜熱嗜酸溫和細菌生理之間的互惠明顯，涉及鐵、硫轉(zhuǎn)變和有機復(fù)合轉(zhuǎn)移，被認為是在促進黃銅礦溶解中發(fā)揮了關(guān)鍵作用。諾里斯等。 2020年 。 C，和菌群由三個菌組成（ At. caldus，藻端螺旋菌。但是，僅有少數(shù)報告對黃銅礦生物浸出定義為中度嗜熱嗜酸微生物的群落。 2020年）。這項研究的結(jié)果可能提供資料的邏輯設(shè)計，對用人工構(gòu)建中度嗜熱嗜酸菌落，用于特殊礦物生物浸出硫化物有重要作用。 C，用來在混合菌劑使混合培養(yǎng)基中做生物浸出實驗。 7H2O, 。 2H2O, 。 7H2O, 30，酵 母膏， 。 浸出實驗每組三樣。 caldus S2的湖嗜鐵鉤端螺旋菌 YSK，嗜熱號 L1和 Sulfobacillus菌。 基因組 DNA提取 使用 TIANamp基因組 DNA純化試劑盒（ Tiangen生物科技，有限公司，北京，中國）提取搖瓶種植中純培養(yǎng)的微生物的 DNA。引物 NRR2,AcaldusP1,LferP1 劉 提 到 過 ， 引 物FerP1,Sacidf,SacidR是用 Premier 。 PCR產(chǎn)物分析采用瓊脂糖凝膠電泳，并在必要時，采用純化用 QIAquick自旋 PCR檢測純化試劑盒（ Qiagen公司，希爾登，德國）。還要設(shè)計陰性對照。 結(jié)果 比較溫和嗜熱嗜酸在混合培養(yǎng)基黃銅礦浸出 混合培養(yǎng)中的溫和嗜熱嗜酸黃銅礦浸出的結(jié)果如圖所示。然而，對非生物控制 pH值在一直逐漸增加。在后期，細胞密度分別為 107個細胞毫升 1 X射線衍射分析結(jié)果表明，浸出群落殘留 1， 4和 5主要包括黃銅礦，黃鉀鐵礬，硫酸鉛礦和二氧化鉛。 PCR擴增特定的16SrRNA基因是基于其非特異性，同 16S rRNA基因樣本相比較在這項研究中的其他物種。 分析結(jié)果表明，群落 4的群落結(jié)構(gòu)在生物浸出急劇變化過程（圖 3）。相 比之下， 16S rRNA基因 F. thermophilum L1 的在最后階段拷貝數(shù)占 41％，雖然中間階段 F. thermophilum L1的比例是在群落中最小。因此，實時 PCR檢測可申請快速檢測和定量變化中的嗜熱細菌浸出涉及溫和黃銅礦。 Ferroplasma菌。直接的機制，它本來是該礦物硫官能團是生物氧化硫酸鹽檢測無任何中間。據(jù)初步在浸礦體系 pH值的增加是由于酸溶解和氧化亞鐵。該群落 4比群落 1有較高的浸出效率，表明。因此， L. ferriphilum YSK數(shù)量在下降與有機生物浸出后期積累化合物來自中度嗜熱（分泌物和細胞裂解液）。m EB (1999) Potential role of Thiobacillus caldusin arsenopyrite bioleaching. Appl Environ Microb 65:36–40 [6]Dopson M, BakerAustin C, Hind A, Bowman JP, Bond PL (2020) Characterization of Ferroplasma isolates and Ferroplasma acidarmanus sp. Nov., extreme acidophiles from acid mine drainage and industrial bioleaching environments. Appl Environ Microb 70:2079–2088 [7]Gao J, Xie J, Ding J, Kang J, Cheng H, Qiu G (2020) Extraction and purification of magic nanoparticles from strain of Leptospirillum ferriphilum. T Nonferr Metal Soc 16:1417–1420 [8]Goebel BM, Stackebrandt E (1994) Cultural and phylogeic analysis of mixed microbial populations found in natural and mercial bioleaching environments. Appl Environ Microb 60:1614–1621 [9]Golyshina OV, Pivovarova TA, Karavaiko GL, Kondrat’eva TF, Moore ERB, Abraham WR, Lunsdorf H, Timmis KN, Yakimov MM,Golyshin PN (2020) Ferroplasma acidiphilum gen. nov., sp. nov.,an acidophilic autotrophic, ferrousironoxidizing, cellwalllacking,mesophilic member of the Ferroplasmaceae fam. Nov., prisinga distinct lineage of the Archaea. Int J Syst Evol Micr 50:997–1006 [10]Gonz225。 這項研究表明，大群落，包括自養(yǎng)和混合嗜酸營養(yǎng)優(yōu)于那些包括只是在自養(yǎng)生物浸出系統(tǒng)
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