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實驗二-聚合酶鏈反應技術、酶切鑒定-免費閱讀

2025-08-28 15:22 上一頁面

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【正文】 (3)電泳:一般電壓為515V/cm。因此該凝膠適合于免疫復合物、核酸與核蛋白的分離、鑒定及純化。酶切后除了目的DNA條帶外,還有其它條帶。4.電泳結束后紫外燈下觀察結果。限制酶BsmAI識別序列如下:539。⑨每次PCR操作都應設陽性及陰性對照:陽性對照使用能出現擴增條帶的最低量的標準病原體DNA,陰性對照不加模板或加其它來源的DNA,試劑加樣操作取量同待測標本。⑤樣品制備應按無菌操作原則進行,避免樣品間相互污染。4.非特異性PCR擴增常見的造成非特異性PCR擴增的原因及相應預防措施如下:引物特異性不高或用量過多;Taq DNA聚合酶質量不好或者用量偏高;Mg2+濃度過高;退火溫度過低,退火以及延伸時間過長;循環(huán)次數過多。注意事項:1.用PCR擴增目的基因,一般多采用商品試劑盒。PCR由變性-退火-延伸三個基本反應步驟構成。3.掌握PCR基因擴增技術的具體操作過程。PCR反應體系:反應體系各成分名稱反應體系各成分濃度各成分體積(181。為了監(jiān)控PCR實驗的污染情況,應該同時設立陰性對照,重復試驗,甚至對PCR產物進行測序分析,以鑒定擴增片段的正確性。②耐高壓的試劑及器材應高壓滅菌,但酶、引物、dNTP、加樣器等不能高壓滅菌,以免試劑失活或器材損壞。其原理是:在PCR反應系統中以 dUTP取代dTTP,使擴增產物中含有尿嘧啶。加熱滅活DNase I或核酸內切酶,再加入Taq DNA聚合酶和模板做PCR。(2)限制性核酸內切酶BsmAI(10u/ul)(3)100bp DNA ladder(4) % 瓊脂糖凝膠(5)TAE緩沖液操作步驟:1.在Eppendorf管中依次加入 μl 雙蒸水 1μl 10酶切緩沖液 5μl DNA BsmAI(10u/μl)2.將裝有上述反應液的Eppendorf管于37℃水浴保溫1小時。4.RFLP酶解片段在電泳分離的過程中,要根據片段的大小選擇不同的瓊脂糖濃度,如果產生的片段大部分小于500bp以下,可選用聚丙烯酰胺凝膠電泳進行分離。第三節(jié) 瓊脂糖凝膠電泳技術目的:掌握瓊脂糖凝膠
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