動物實驗基本技術(shù)完整版-預(yù)覽頁
【正文】 （黃色）即可。染色法雖然簡單方便，不會給實驗動物造成損傷和痛苦，但是長時間實驗會使涂染劑自行褪色，因而染色法對慢性實驗不適用。用打孔機在耳朵打孔后，必須用消毒過的滑石粉抹在打孔局部，以免傷口愈合過程中將耳孔閉合。烙印方法有兩種，對犬等大動物，可將標(biāo)記號碼烙印在其皮膚上（如耳、面、鼻、四肢等部位），對家兔、豚鼠等動物，可用數(shù)字號碼鉗在其耳朵上刺上號碼；烙印完成后，傷口涂抹酒精黑墨等顏料，即可清楚讀出號碼。實驗人員可根據(jù)實驗動物品種、實驗類型及實驗方式，選擇合適的標(biāo)記編號方法。 進行采血或動、靜脈穿刺時，常用此方法暴露血管穿刺的部位。這是家兔和犬頸部手術(shù)，家兔胸、腹部手術(shù)，局部皮膚需要去除被毛時常采用的方法。剃毛時必須繃緊局部皮膚，盡量不要剃破皮膚。此法常用于大動物無菌手術(shù)，局部皮膚刺激性實驗，觀察實驗動物局部血液循環(huán)等實驗。脫毛方法使用脫毛劑前應(yīng)剪去局部被毛，但剪毛前不能用水濕潤被毛，以免脫毛劑流入毛根造成損傷。實驗動物給藥途徑和方法一、皮下注射注射時以左手拇指和食指提起皮膚，將連有5（1/2）號針頭的注射器刺入皮下。二、皮內(nèi)注射皮內(nèi)注射時需將注射的局部脫去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮膚并使之繃緊，在兩指之間，用結(jié)核菌素注射器連4(1/2)細(xì)針頭，緊貼皮膚表層刺入皮內(nèi)，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射藥液，此時可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。 四、腹腔注射用大、小白鼠做實驗時，以左手抓住動物，使腹部向上，右手將注射針頭于左（或右）下腹部刺入皮下，使針頭向前推兔耳中央為動物，耳外緣為靜脈。 小白鼠和大白鼠 一般采用尾靜脈注射，鼠尾靜脈有三根，左右兩側(cè)及背側(cè)各一根，左右兩側(cè)尾靜脈比較容易固定，多采用，背側(cè)一根也可采用。注射前由助手將動物側(cè)臥，剪去注射部位的被毛，用膠皮帶扎緊（或用手抓緊）靜脈近端，使血管充盈，從靜脈的遠(yuǎn)端將注射針頭平行刺入血管，待有回血后，松開綁帶（或兩手），緩緩注入藥液。用眼科彎鑷迅速夾去眼球，將鼠倒立，用器皿接住流出的血液。兔耳中動脈采血每次采血量15ml。 導(dǎo)尿法收集尿液: 施行導(dǎo)尿術(shù)，較適宜于犬、猴等大動物。用導(dǎo)尿法導(dǎo)尿可采集到?jīng)]有污染的尿液。在兩側(cè)輸尿管近膀胱處用線分別結(jié)扎，于輸尿管結(jié)扎處上方剪一小口，向腎臟方向分別插入充滿生理鹽水的插管，用線結(jié)扎固定插管，即可見尿液從插管滴出，可以收集。用無菌止血鉗小心提起皮膚，右手持小針頭或穿刺套管針沿下腹部靠腹壁正中線處輕輕垂直刺入，注意不可刺入太深，以免損傷內(nèi)臟，針頭有落空感后。猴、犬、羊等大動物骨髓的采集用活體穿刺取骨髓的方法；大、小鼠等小動物骨頭小難穿刺，只能剖殺后采胸骨、股骨的骨髓。（4）髁骨：穿刺部位在髁前上棘后2～3厘米的髁嵴。非揮發(fā)性麻醉劑 這類麻醉劑種類較多，包括苯巴比妥鈉、戊巴比妥鈉、硫噴妥鈉等巴比妥類的衍生物，氨基甲酸乙脂和水合氯醛。粘膜表面麻醉宜用2%鹽酸可卡因。麻醉注意事項n（1）靜脈注射必須緩慢，同時觀察肌肉緊張性、角膜反射和對皮膚夾捏的反應(yīng)，當(dāng)這些活動明顯減弱或消失時，立即停止注射。此時常需采取保溫措施?！?，℃177。實驗動物處死方法一、椎脫臼處死法此法是將實驗動物的頸椎脫臼，斷離脊髓致死，為大、小鼠最常用的處死方法。 三、擊打頭蓋骨處死法 主要用于豚鼠和兔的處死。犬、猴等大動物應(yīng)在輕度麻醉狀態(tài)下，在股三角做橫切口，將股動脈、股靜脈全部暴露并切斷，讓血液流出?？諝馑ㄈ幩婪ㄗ⑷氲目諝饬?，貓和兔為20～50ml，犬為90～160m
公司管理相關(guān)推薦
鄂ICP備17016276號-1